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标题:【求助】关于realtimePCR条件如何摸索?

whitesheep[使用道具]
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做了realtime pcr才发现有那么多问题。
在PE7000上,有threshold 和baselin两种分析方法。据ABI公司的专家培训,认为在分析的时候,或者选用threshold ,或者选择baseline来进行分析。如果选择threshold 以后,再选择baseline的范围,则仪器会根据后者的方法来计算(根据baseline的10倍标准差来计算域值),如threshold的选择在后,则根据threshold来计算。但是,我们发现,threshold的选择位置不同,即使采用同样的baseline进行分析,最后的CT值差异比较大。不知大家对这个问题是怎么解决的。
另外,在体系的优化过程中,不知大家采用怎样的优化过程,1.反应条件;2.模板浓度;3.引物和探针的浓度;4..Mg2+浓度;还是其他,我觉得,模板对结果的影响很大,在摸条件的时候,如果模板不稳定,则重复性也很不好!
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milkdog[使用道具]
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我的片段已小于100bp,亦发现Mg++的影响还是很大的。但退火温度不要小于59C为好。
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ha111[使用道具]
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谢谢各位高手指点,这里向大家有礼了!Smile
目前跑细胞株药物作用后的基因表达趋势,觉得real-time还是能做出一点趋势来的,虽然不同锅之间的差异问题还是存在,但是我只有通过不断的重复来肯定所得的结果。不过,我不知道如果要发文章,怎样才算是有科学性的?是给一条曲线,上面标出复管之间的误差线呢,还是发至少三条曲线上去,说明结果是solid的?QuestionQuestion
以我的经验觉得,realtime在结果的可信性上确实存在问题,一次结果实在不能说明问题,我看3次也未必能够。因为实在太不容易稳定了,不同锅之间根本不可能进行统计分析,所以我觉得realtime的统计和传统的PCR肯定是不一样的,比如如何进行临床标本检测的统计?如何进行实验研究的统计。我指的不是简单的阳性阴性,而是数值上的变化和变化所赋予的意义,这点我非常想得到高手的指点!!
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dior[使用道具]
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请教各位高手,5’端和3’端的标记如何决定,不同标记对实验结果与操作有什么影响吗?TAQMAN探针大家都是选择那家公司的,我准备做RT-PCR,但是对存在的困难还一无所知,以后请各位高手多多指导。谢谢
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veiwu[使用道具]
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现在国内有做BHQ标记的吗?什么价钱,据说效果还是不如TEMARA.
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veiwu[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 dior 于 2015-6-1 17:34 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
请教各位高手,5’端和3’端的标记如何决定,不同标记对实验结果与操作有什么影响吗?TAQMAN探针大家都是选择那家公司的,我准备做RT-PCR,但是对存在的困难还一无所知,以后请各位高手多多指导。谢谢 ...

最常用的还是5fam,3tamera.不同的荧光染料的稳定性受PH值影响不同。跟仪器的要求也有关系
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purrr[使用道具]
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我一直在做定量,mg2+和taq的结论和你说的一样,但是我的退火温度没有像你说的情况,一年前,我有个基因的定量,什么条件都试过,结果就是不好,有两种现象,一个是荧光信号在抬头后,很快就到平台期,另一个是荧光信号抬头后,反应效率很低。后来我又作料很多其他的基因,现在归结到一个问题上,引物和探针很重要,不行就是不行,怎么调整都不行,只能重新设计。并且设计时,定量结果好的和坏的的基因引物设计是按照一个理论来的。不知道这是怎么回事,请主任帮帮分析一下,我那个两个不的现象。谢谢!
你设计的探针和引物从来没出现过问题吗?
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我不是很清楚你的情况,是不是你用taqman系统,你说的现象出现在quantitation data显示的曲线中?
我作taqman没有遇到过这种情况,但是在SYBR Green中遇到过第一种现象,跟基因量和其在指数增长期的位置有关。我见到的大多数基因在quantitation data中从基线穿出就是指数曲线的模样了,但是我的一个基因从基线出来所有样本都是缓慢增长,到了norm fluoro10的-2次方才开始成为指数模式,但是范围比较窄,到了10的0次方就结束了(可能就是到了你所说的平台期),我想可能是因为最初基因的量没有达到指数增长期。至于基因的指数增长期,我想跟基因本身和系统都有关系(包括引物和探针)。我也只是猜,没有得到任何证实。
你的第二种现象我不太明白,是不是系统的反应效率低?
关于引物和探针,很幸运,我还没有遇到过太大的问题。通常我的引物都是取自别人的文献,如果查不到,老板不让我用任何引物设计软件,必须自己设计。我的一对引物用的是文献上的,但是Tm值相差很大。我在做标准曲线时,寻找退火温度成了大问题,只好一度一度的试,一段时间也是怎么试都不行,结果极不稳定,扩增效率怎么都不好。我也觉得是引物出了问题,准备换。但是后来我用rRNA稀释质粒DNA增加其稳定性,结果系统比较好了。之后我总结是由于DNA的反复冷冻溶解是其破坏引起的。
关于引物和探针这方面,我的却是没有什么经验,体会也不是很深,还需要向你多多请教。
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用rRNA稀释质粒DNA增加其稳定性?有相关文献吗?我也想学学。“由于DNA的反复冷冻溶解是其破坏引起的”这个问题在座pcr时是很严重的问题吗,我那个基因的第一个引物和探针就是取自别人的文献,结果如我上面所说,没办法,我运气不好。
看你的pcr条件的摸索,看来我那个基因的问题到你手上,肯定可以解决问题。你是怎么单位来着?
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H2O[使用道具]
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关于用rRNA稀释质粒DNA增加其稳定性,我没有文献,我也是从别人那里学的。我最初用去RNA酶的水稀释质粒DNA,反复冷冻溶解对结果影响很大,每次都是刚刚稀释出来的结果最好,反复冷冻溶解几次结果差别很大;后来改进一下每天都用新稀释的质粒,不冷冻只冷藏,只用一天,第二天重新稀释,结果就好了不少。后来同事告诉我用rRNA溶液稀释,结果经过反复冷冻冷藏结果仍很稳定。
我说说我的第一个引物,那是刚刚开始接触分子生物,几乎一无所知,看到文献上的就买来用,结果引物中有TTT和AAA,这是违反引物设计原则的,但是买来就用吧,没想到出产物了,我把产物测序后也没有问题。后来那这对引物做real time,退火温度怎么都调不好,不是效率不好就是no template control里有信号。一看才发现一个Tm是58度,另一个是66度。当时我觉得这对引物不行了,想换。但是一想到换了引物还要重新做测序,我还是再试试吧。当时我也意识到DNA破坏对实验的影响,就只用新稀释的质粒,居然系统慢慢稳定下来了。我想我的这对引物问题这么多居然还能把系统建立起来,一方面是我比较有耐心,可能更大的是运气好吧。
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