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标题:[讨论帖]免疫细胞或组织化学染色的相关问题

redbutterfly[使用道具]
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由于没有甩片机,我用粘片剂将细胞粘于玻片上,粘片剂需稀释50倍,用什么稀释呢? 别人告诉用丙酮,一定要用丙酮吗?那么接下来的固定是否可用多聚甲醛呢?
另外,丙酮固定细胞因为会溶解脂质而破坏细胞亚结构,而我要用荧光的方法来看NFKB的活化之后的核转位,那么丙酮之类的有机溶剂的固定是否就不适合了呢?那用丙酮来稀释粘片剂是否就不好了呢?
还有单独用多聚甲醛固定细胞并不能是抗体进入细胞内,须用非离子去污剂来透化细胞,但是有人告诉我一旦加入TritonX-100(0.2%)后细胞马上就会溶解消失,文献上给予细胞内抗体都会用到这些透膜剂,到底是怎么一回事呢?

急切期望高手的解答!
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redbutterfly[使用道具]
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请问多聚赖氨酸用什么稀释?
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ffooll[使用道具]
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我是用4%的多聚甲醛固定15分钟,最后好多细胞都没有了,我想用多聚赖氨酸处理,但不知怎么处理,多聚赖氨酸需要除菌吗?如何除菌,我的细胞爬片已消毒好了,用多聚赖氨酸处理后是否要再消毒?请主任指点一下?谢谢!
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49888[使用道具]
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上述组化步鄹是组织切片的,而对培养的细胞则比较简单:(细胞最好种在玻片上)

1。固定液固定10-30min,0.01MPBS清洗2min×3;

2。羊血清封闭液封闭(可以加入0.3% Triton X100 )30-60min分钟;

3。加入用血清稀释液(牛血清白蛋白1.00g+0.01MPBS 100ml+叠氮纳0.08g+30% Triton X100 1ml)稀释的第一抗体室温反应1-2h或4℃过夜。吸去抗体,0.01MPBS洗2min×3;

4。加入血清稀释液或0.01MPBS稀释的二抗,室温孵育1h。吸去二抗,0.01MPBS洗2min×3;(如果是荧光二抗就可以直接用50%甘油封片,进行观察了)

5。加入ABC复合物,室温孵育1h,0.01MPBS洗2min×3,蒸馏水迅速冲三次;

6。加入硫酸镍铵溶液(DAB 25mg+蒸馏水50ml+硫酸镍铵醋酸缓冲液50ml+葡萄糖200mg+氯化铵40mg+葡萄糖氧化酶1mg),进行免疫细胞化学显色,时间不超过30min。不时在显微镜下进行观察,待细胞着色而背底颜色较淡时马上吸去显色液,蒸馏水迅速冲三次后加入0.01MPBS终止反应;

或直接加入配好的DAB溶液进行显色。

7。梯度酒精(70%、80%、90%酒精5min×1,95%酒精5min×2,100%酒精5min×3)脱水之后,50%明胶封片。

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你好。请问细胞爬片固定完之后应该如何保存?-20度直接冻可以吗?谢谢
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TAT[使用道具]
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我要鉴定内皮细胞,前面的贴子都拜读了,还是有一些问题请教大家:
1: 我需要用两种荧光标记的抗体(FITC和DIL直接标记)来鉴定培养的内皮细胞,前者是膜抗原,后者是可以吸收到胞浆中的,请问加入Triton X100,会影响胞膜的标记吗?这两种不同的荧光抗体要分开在不同的爬片上标记吗?
2: 因为培养的是贴壁生长的内皮细胞,为了能保持其变形的形态,是将消毒的盖玻片放进培养板培养待细胞贴壁变形后拿出来染色,还是将细胞从培养孔中消化后放到涂有多聚赖氨酸的盖玻片上染色观察,那种方法更好一些?因为国外的文献是用纤维连接蛋白包被培养孔培养细胞,我是否有必要再用多聚赖氨酸包被制作爬片用的盖玻片?
3: 制作好爬片后,就按照主任说的多聚甲醛固定,封闭,标记等步骤操作,因为我买的是直标的抗体,,是否可用0.01M的PBS稀释相应的荧光抗体后直接加到爬片上孵育后封片观察?封闭用人血清可以吗?封片如何操作?
4: 在孵育的过程中要是爬片风干了会影响结果 吗?
5: 在观察的时候,一般是把盖玻片(爬片)放在载玻片上,请问是将盖玻片(爬片)有细胞的一面朝上还是朝下?
菜鸟问题,见笑了
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loli[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 TAT 于 2012-3-13 13:35 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我要鉴定内皮细胞,前面的贴子都拜读了,还是有一些问题请教大家:
1: 我需要用两种荧光标记的抗体(FITC和DIL直接标记)来鉴定培养的内皮细胞,前者是膜抗原,后者是可以吸收到胞浆中的,请问加入Triton X100,会影响胞膜的 ...

因为我也在做类似的题目,所以谈一下我的看法,其实都可以从Midas主任的帖子里找到答案的:
1 两种不同的荧光,颜色不同,分别在胞膜和胞浆中,应该可以同时染,可以参看“免疫荧光双标”的protocol,至于加不加Triton X100,可以做个对照,看一下结果再决定;
2 我用多孔板培养内皮细胞,常规要先用明胶包被,以利于内皮细胞生长,PLL应该也很好用;
3 封闭用什么抗体看你切片是什么动物了,封片用50%甘油滴一滴,盖玻片盖上即可。
4 绝对不能干!
5 向上
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Re:在观察的时候,一般是把盖玻片(爬片)放在载玻片上,请问是将盖玻片(爬片)有细胞的一面朝上还是朝下?
Please see the answer from " Curren Protocol in Cell Biology": Label slides and place 1 drop of mounting medium onto slide. Pick up coverslip from well , gently blot off excess PBS by touching the edge to a Kimwipe, then invert coverslip , cell-side-down , onto drop. Gently blot mounted coverslip with paper towel, then seal edge of coverslip onto slide by painting the edge with a rim of nail polish. Let dry.

So should be cell-side-down, if you put it otherwise, then you are wasting your time.
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guagua[使用道具]
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请问:固定和破膜(eg.Triton X-100)到底哪个在前比较好,因为我看到好多操作都不一样?谢谢。
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join[使用道具]
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Fixation first, permeabilization second.
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小鱼鱼[使用道具]
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问一个很菜的问题:没有指明3%过氧化氢甲醇溶液的就是单纯的3%的过氧化氢吗?我做的是脑组织的冰冻切片,应该用那种呢?3%的过氧化氢怎么配呀?
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