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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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实验进展不好,84,91目的条带有。但内参和25,46的条带无论如何出不来。
标本量有限,增大上样量已不可能,应该怎么办?
用的抗体是CELLSIGNAL的。一抗推荐1:1000不变
二抗1:1000-3000
是哪里出了问题?
能给个解决问题的思路么

==============================

内参都做不出来你还做目的蛋白啊?
先把内参做好
换抗体
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你好,我想问一个问题:
我在转膜的时候如果一个转膜槽中转两块胶的话,那么靠近负极的那板老是转不好,就是像被水冲散了一样,是怎么一回事呢?
请帮忙回答,谢谢。

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我没碰到过这样的问题
如果一块好一块不好,你可以考虑转移槽的问题
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wood533[使用道具]
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内参都做不出来你还做目的蛋白啊?
先把内参做好
换抗体

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说错了,时有时无,内参。不是没有
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说错了,时有时无,内参。不是没有

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先做内参
稳定你的系统
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wood533[使用道具]
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先做内参
稳定你的系统

======================================================

请问下是不是只要内参出的来,目的条带出不来就是抗体的问题?
或者说只能加大上扬量?怎么才能确定是不是抗体的问题
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请问下是不是只要内参出的来,目的条带出不来就是抗体的问题?
或者说只能加大上扬量?怎么才能确定是不是抗体的问题

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1,先确定内参说明你在整体的操作上没有问题,以及二抗也没有问题(内参、目的蛋白采用的二抗没有问题,如果目的蛋白与内参采用不同的二抗要确认二抗没有问题)
2,目的蛋白做不出来有以下几点
A:目的蛋白上样量不够
B:目的蛋白没有提取出来(不同蛋白在细胞中的定位不同:如核、膜等)
C:目的蛋白抗体特异性不好
D:检查抗体的cross reaction的物种
E:用阳性对照样品来确定
F:ECL敏感性不够
G:抗体的稀释度有问题
H:抗体买回来之后的保存条件、避免反复冻融及污染
排除这些问题之后基本上就可以确认目的蛋白抗体有问题了
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师兄你好,我的蛋白样品出现絮状沉淀,加样时感觉一团一团的,果然电泳的时候出现了明显的拖尾现象。
我是先裂解的蛋白,然后12000离心,我一般离心2次,每次5到10分钟,就是怕离心的不彻底,离心完之后就加入loading buffer变性分装-20度保存。
我的样品才提了3天,所以我觉得应该不会是已经发生变质了,难道使用之前还要进行离心吗,可是我已经分装了,每一管才30ul,请问应该是什么问题,如何解决,谢谢了!

变性后,上样之前短暂离心,取上清电泳
(蛋白浓度多大?)

师兄你好,我照着你的方法做了,这样离心的话会不会把浓度变低了呢,我之前没有测蛋白浓度,所以也不清楚,不过我现在上同样的量的话感觉出来的荧光条带没有以前亮了。
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QUOTE:
原帖由 831226 于 2013-2-22 15:49 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
师兄你好,我的蛋白样品出现絮状沉淀,加样时感觉一团一团的,果然电泳的时候出现了明显的拖尾现象。
我是先裂解的蛋白,然后12000离心,我一般离心2次,每次5到10分钟,就是怕离心的不彻底,离心完之后就加入loading buffer变性分装 ...

1,蛋白浓度过高,加入sample buffer进行蛋白变性时容易有沉淀产生(血清进行电泳前如果不调整浓度直接加入sample buffer会有沉淀产生,因为SDS量还没有蛋白多)
2,蛋白浓度应该调整后进行变形
3,蛋白离心的时候有一些杂质被吸出来
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老师:
我买的ABCOM的GABAAR α1 抗体,做大鼠脑组织(大脑皮层、海马、小脑),大鼠用农药处理。
做出的结果条带总是不清晰,
上样量用到80微克,
电泳条件:80U,20分钟;120U,70分钟;
转膜:PVDF,50U,70-90分钟;
一抗1:1000,
二抗:1:3000(碱性磷酸酶的)

怎么改进呢?
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QUOTE:
原帖由 flower-201 于 2013-2-23 11:10 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

老师:
我买的ABCOM的GABAAR α1 抗体,做大鼠脑组织(大脑皮层、海马、小脑),大鼠用农药处理。
做出的结果条带总是不清晰,
上样量用到80微克,
电泳条件:80U,20分钟;120U,70分钟;
转膜:PVDF,50U,70-90分钟;
一抗1:1000,
二抗:1:3000(碱 ...

用ECL方法试试
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