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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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> >我推测会不会是你配胶和凝胶有问题呢?再者,电泳的时间如果必须那么长应该降温的。当然后者不至于出来斜的。仅供参考,希望有用。
>
> 蒽,我想也是分离胶凝固的时间短了,不到一个小时,电泳时间太长后来太热是不是会把下面的分离胶给融了。
> 还有我想再请教您一下,我做的目的蛋白p53曝光时间30分钟,没做出来,actin做出来了,抗体是santa cruz兔多抗,浓度1:200,不知道是不是曝光时间不够还是怎么回事?上样量约50ug。看您在前面说p53很容易做出来,我做了几次都没做出来。。。不过曝光时间都在30分钟以内,没试过过夜曝光。
> 再次感谢您~

不必客气!其实我也是新手,观点仅供参考!一般我是配好ECL后稍震荡混匀后放在暗房中,做一下其他准备工作,约1-2分钟后在暗房孵育,关门,看到荧光后转移至保鲜膜中,开始压片。有时候是会过几分钟在保鲜膜中的荧光更亮,也可以理解,但前提是之前要见到荧光的。我一般看不到荧光是不会先曝光的。其实如果二抗的浓度合适,荧光没有那么容易淬灭的。据说如果加上ECL5s内出现荧光,说明二抗浓度过高,而且这种一般淬灭也较快。P53我没有做过,您可能看错贴了,请另外问做过的高手吧,祝好运!
关于胶会不会温度高再融我说不好,不太清楚。最好前一晚配好,在4度过夜让胶充分交联好些。个人经验,分离胶需至少常温1h后再动它,再加浓缩胶。仅供参考哈,希望有用,goodluck!
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楼主你好,今天我的内参加上发光液后立马就可以在PVDF膜上看到很明显的黄黑色条带,到暗室曝光时,条带的地方却是黑色的,曝光出来的条带是白色的,背景是黑色的,只有条带的轮廓,请帮我分析一下原因,昨天的结果还是好好的,一样的条件就是二抗孵育的时间由1小时延长到了2小时
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你好,请问一下:
我做的是ps1,28kd左右,刚开始几次用牛奶封闭(光明脱脂奶)做不出来,后来该用1%bsa封闭居然做出来(虽然同时加大了上样量),只是非特异带太多,看园子里战友都说两者封闭效果差不多,于是在接下来的几次里再次改用牛奶封闭(bsa太贵,而且杂带确实很多),而且上样量>=上次做出来的上样量,其他条件都没有变过。但都没有做出来,直接一片空白,
我真的想知道bsa或牛奶封闭在能不能做出来这方面起到这么大的决定作用?
谢谢!

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两者的封闭效果是有不同
有些蛋白有不同的要求,如磷酸化蛋白就需要用BSA
BSA的使用浓度要高一些,至少3%
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版主,我做得wb内参都出来了,目的条带有得泳道有有的泳道没有,按说应该都有的,内参都出来了,应该可以排除提蛋白得问题,我这个蛋白是提取得组织的蛋白,组织的这种目的蛋白含量应该不低得,提取过程也没什么问题得,想请教下这个可能得原因?多谢!!!

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每个泳道上样量一致吗?
内参条带是不是参差不齐?
如果是这样的话浓度低的要提高上样量
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请问大侠,NC膜和PVDF膜怎么使用,您能详细给我解答吗,谢谢!

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NC膜在转移缓冲液中平衡后直接使用
PVDF用无水甲醇活化10S左右,用蒸馏水洗去无水甲醇,然后在转移缓冲液中平衡后直接使用
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楼主你好,今天我的内参加上发光液后立马就可以在PVDF膜上看到很明显的黄黑色条带,到暗室曝光时,条带的地方却是黑色的,曝光出来的条带是白色的,背景是黑色的,只有条带的轮廓,请帮我分析一下原因,昨天的结果还是好好的,一样的条件就是二抗孵育的时间由1小时延长到了2小时

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膜是不是没有活化好
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我一直在做wb,结果是时好时坏。做xiap蛋白,好几天没有结果了,今天出了个beta-actin.但是和以前的内参结果不一样
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QUOTE:
原帖由 kulee 于 2013-2-23 17:03 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我一直在做wb,结果是时好时坏。做xiap蛋白,好几天没有结果了,今天出了个beta-actin.但是和以前的内参结果不一样  

样品多长时间了
中间冻融过吗
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kulee[使用道具]
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没冻融过 谢谢。谢谢
新提取的
同一个样品,不同的上样量,会出现这样的结果,是上样量太大了吗?还是1,2抗的浓度需要再调整呢?
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NBA[使用道具]
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同一个样品,不同的上样量,会出现这样的结果,是上样量太大了吗?还是1,2抗的浓度需要再调整呢?

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从内参条带来看上样是太大了
抗原含量太高把抗体都结合完了(一抗不够)
出现部分结合不好
另外你的孵育体系是多少ml?
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