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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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QUOTE:
原帖由 xyw5 于 2013-3-9 09:31 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我想请问下各位前辈一个问题,我的目的蛋白是重组在了有红色荧光蛋白的载体上的,那么我在说WESTERN BLOT的时候我的目的蛋白的大小还是它原先的大小,还是我应该把红色荧光蛋白的大小也加上,才是最终的大小啊?谢谢 ...

要加上荧光蛋白
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summerxx[使用道具]
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想请教一下,检测细胞培养液中蛋白,最后显出的带型很宽

培养液是10%FBS,是不是浓度太高有影响?或者是浓缩胶不够?我用的是12%SDS-PAGE,转膜250mA 2hours,上样量30ul,蛋白总浓度大概40-50ug

谢谢指点
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呃怎么图片没有了,重新发个,今天的结果依然很郁闷,同样的蛋白,上面的那张膜是不同浓度处理的下面的是不同时间的,上样量和操作都一样,就是不知道问题在哪?为什么上面的那张膜几乎什么都没有?用的是ECL发光试剂盒显影。


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2013-3-9 09:33
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还有啊,每次我都用脱脂奶室温封闭两小时,洗膜也都是用TBST,为什么杂带还是这么多,背景黑乎乎的,一抗和二抗都是1:1000,做ACTIN背景挺干净的,二抗是抗兔的。
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想请教一下,检测细胞培养液中蛋白,最后显出的带型很宽

培养液是10%FBS,是不是浓度太高有影响?或者是浓缩胶不够?我用的是12%SDS-PAGE,转膜250mA 2hours,上样量30ul,蛋白总浓度大概40-50ug

谢谢指点

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太宽的话一般与上样量大有关
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还有啊,每次我都用脱脂奶室温封闭两小时,洗膜也都是用TBST,为什么杂带还是这么多,背景黑乎乎的,一抗和二抗都是1:1000,做ACTIN背景挺干净的,二抗是抗兔的。

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杂带与你封闭关系不是很大
室温封闭30min足够
目的蛋白的一抗做几个不同的稀释度
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SDS-PAGE电泳后面染色再脱色,同样可以检测目的蛋白,为什么一般都做western-blot,而不做SDS-page呢?
望各位专家指点。
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SDS-PAGE电泳后面染色再脱色,同样可以检测目的蛋白,为什么一般都做western-blot,而不做SDS-page呢?
望各位专家指点。

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SDS-PAGE染色后你能确定目的蛋白吗?
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想请教NBA老师:我刚做westernblotting ,由于有师兄的带领,程序还比较熟悉。只是很郁闷的是,我做了三次,目的蛋白都是黑带,而内参都是白带。
我的目的蛋白比较大,有180kd,内参是B-actin为43kd,电转3h,3%BSA封闭2小时,一抗1:1000过夜,二抗1:5000 2小时,洗膜后ECL显影,目的蛋白整条带发荧光,内参什么都看不到,曝光后就是目的蛋白黑带,粗黑,很吓人,而内参白带。急死我也!
很是郁闷,想请问老师.我的目的蛋白出现黑带,内参白带的最可能原因是?????
此外,出现黑带和白带有哪些原因造成。非常感谢!
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原帖由 131415 于 2013-3-9 09:37 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

想请教NBA老师:我刚做westernblotting ,由于有师兄的带领,程序还比较熟悉。只是很郁闷的是,我做了三次,目的蛋白都是黑带,而内参都是白带。
我的目的蛋白比较大,有180kd,内参是B-actin为43kd,电转3h,3%BSA封闭2小时,一抗1:1000 ...

1、蛋白上样量太大
2、二抗浓度太高
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