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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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你的目的蛋白分子量是33kD,转膜条件应该为150-180mA,30-40分钟,(按0.8-3.0mA/cm2),封闭时间最好长点,我一般室温3-4小时,一抗4度过夜,二抗2-3小时(室温)
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可能是配胶玻璃架插入电泳槽是,两边胶皮垫没卡紧,漏电泳液,或配胶玻璃间有缝隙,应该涂少许凡士林,
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你的目的蛋白分子量是33kD,转膜条件应该为150-180mA,30-40分钟,(按0.8-3.0mA/cm2),封闭时间最好长点,我一般室温3-4小时,一抗4度过夜,二抗2-3小时(室温)

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你好,谢谢你的回复,不过为什么我同学用250mA的可以跑出我的目的条带呀?
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楼主您好!

最近做WB用TMB显色
(这是我用的配方:
buffer:0.1M 柠檬酸+0.2M Na2HPO4 pH5.0-5.4
TMB:2mg/ml溶于无水乙醇或者DMSO
H2O2: 30%

工作液:0.5ml TMB+ 9.5ml buffer+ 1ul H2O2
),
约10min后,目标条带出现黄色.不是出现蓝色吗?然后我用水漂洗结果条带消失。再显色就出不来了,请问原因是什么?
HRP最为灵敏的显色液是什么?哪个公司的比较好?
我的蛋白是70K左右,湿转条件你推荐是多少V多少时间?

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你这个配方不是沉淀型TMB的配方
怎么能把条带留在膜上啊?
需要用沉淀型的TMB
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建议:1.新配电泳液,转膜液,2.分子量较大,建议做6%(最佳分离浓度)的SDS胶,电泳时间80v浓缩胶, 120v分离胶,转膜基本可以,3.洗膜时间延长,一抗洗45分钟,3次,每次15分钟,二抗洗1小时,20分钟一次,洗三次,4.根据亮度调整曝光时间,胶片是用柯达的。我做的是125KD的,背景很亮。
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转膜250mA时间30分钟左右,也可以转上,但效率比转膜条件150-180mA,30-40分钟,理论上差点,因为你的蛋白分子量小,只有33KD
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相关疾病:
肿瘤


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可能是配胶玻璃架插入电泳槽是,两边胶皮垫没卡紧,漏电泳液,或配胶玻璃间有缝隙,应该涂少许凡士林,

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是的,确实是这样,感谢。我现在在提取肿瘤组织蛋白,无论是怎么提取,始终没有发现蛋白,很是郁闷啊!

[ 本帖最后由 wmp1234 于 2013-3-9 15:52 编辑 ]


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LZ你好,我最近做western遇到一个问题,转完膜之后,预染MARK在膜上看不到,胶上也没有。
我的一块,染了胶,发现还有条带,说明转膜不成功。
帮同学做的一块,染了胶,没有条带,他后续做了一抗二抗ECL等工作,阳性对照是有的。
我要检测的蛋白是30-50KD,转膜时间90min,恒流300mA。同学检测的是20左右。
我想问一下,是不是因为我的膜比同学的膜小很多,面积不同,造成不能用同一电流条件做呢?
昨天又做了一次,因为我只有5个孔道,带MARK,为了不浪费膜,只取了25-75kd区段,所以膜也剪得很小。转膜条件 300mA 100min。染了转过的胶,有一些若有似无的条带。我还有必要做下去么?谢谢!
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QUOTE:
原帖由 xueyouzhang 于 2013-3-9 15:54 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

LZ你好,我最近做western遇到一个问题,转完膜之后,预染MARK在膜上看不到,胶上也没有。
我的一块,染了胶,发现还有条带,说明转膜不成功。
帮同学做的一块,染了胶,没有条带,他后续做了一抗二抗ECL等工作,阳性对照是有的。
我要检测 ...

电极放反?
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xueyouzhang[使用道具]
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电极放反?

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没有啊。有没有别的解释?
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