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标题:【讨论帖】western blot问题解答

abc816[使用道具]
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3501
 
我没碰到过这样的问题
看看膜是不是过期

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谢谢老师的回答。师姐说她以前也碰到过几次做出这种结果的情况,也不知道什么原因,后来又没有出现过了。
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3502
 
请问250kd的蛋白,转膜条件是什么? 湿转和干转是什么概念?我用的是1Xtansfer buffer,然后胶完全泡在BUFFER里面转膜,是不是湿转?谢谢~

===============

湿转
300mA 恒流
2h30min足够了
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如果样品讲解的话一般是因为什么原因呢?样品降解了有什么特征?谢谢啦~

==============================================

如果是用WB的话
会出现多条带(与未降解样品对照,需要有对照做对比)
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谢谢你好意,不过我的阳性对照能做的出来,就是需要大量的样品和长时间的抗体孵育, 所以我怀疑wb系统的某个或某几个因素导致灵敏度太低。如何能在更少上样量(如30ug),抗体孵育时间更短的情况下把目的条带做出来? 这就是我想要解决的。

我的二抗是santa c.的, 有驴抗羊,和羊抗鼠的。 ECL是伯乐的。

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一抗稀释度多少?可以改变一下试试
另外一抗是否孵育过夜?
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abc816[使用道具]
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湿转
300mA 恒流
2h30min足够了

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谢谢您的回复。还想请问,250KD,和150KD两个蛋白在同一张膜上做,6%的胶和7.5%的胶或者其他什么浓度的胶比较好?
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QUOTE:
原帖由 abc816 于 2013-3-14 12:16 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
湿转
300mA 恒流
2h30min足够了

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谢谢您的回复。还想请问,250KD,和150KD两个蛋白在同一张膜上做,6%的胶和7.5%的 ...

7.5%或者8%就可以
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您好,我是新手,请教一些问题!

1,我现在正做目标蛋白,显影时加发光剂能发亮,但是将胶片放入显影夜时胶片就变成了黑色,看不到条带。但是暗夹里的目标蛋白一直在亮,没有淬灭。现了好几次胶片都是黑板,这是怎么回事呢?

2,做内参时,也是在显影液中随着条带的出现胶片就逐渐变黑,将胶片放入定影液也没什么作用,作出的背景特别黑。只有几个胶片背景不黑,这是怎么回事。也红外线有关系吗,还是胶片或显影液的问题。但是以前师兄师姐做事条件相同也没有这样的情况?

3,定影液的作用是什么,能让背景变淡吗,怎么每次把胶片放入时条带都会变粗呢?

谢谢啊!!
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300mA 恒流
2h30min足够了

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谢谢您的回复。还想请问,250KD,和150KD两个蛋白在同一张膜上做,6%的胶和7.5%的胶或者其他什么浓度的胶比较好?
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谢谢您的回复。还想请问,250KD,和150KD两个蛋白在同一张膜上做,6%的胶和7.5%的胶或者其他什么浓度的胶比较好?

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7.5%或者8%就可以
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您好,我是新手,请教一些问题!

1,我现在正做目标蛋白,显影时加发光剂能发亮,但是将胶片放入显影夜时胶片就变成了黑色,看不到条带。但是暗夹里的目标蛋白一直在亮,没有淬灭。现了好几次胶片都是黑板,这是怎么回事呢?

2,做内参时,也是在显影液中随着条带的出现胶片就逐渐变黑,将胶片放入定影液也没什么作用,作出的背景特别黑。只有几个胶片背景不黑,这是怎么回事。也红外线有关系吗,还是胶片或显影液的问题。但是以前师兄师姐做事条件相同也没有这样的情况?

3,定影液的作用是什么,能让背景变淡吗,怎么每次把胶片放入时条带都会变粗呢?

谢谢啊!!
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