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标题:【讨论帖】western blot问题解答

october7[使用道具]
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十分谢谢楼主的回答,我的上样量是15μL(用loading处理后的总上样量),我蛋白的浓度是10μg/μl左右,总量大概是120μg。胶都没有什么问题,分离胶的时间也是90分钟.
我试试减小上样量!若有问题在向楼主请教!

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上样量好大啊!
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october7[使用道具]
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我做的是大鼠脊髓挫伤,检测caspase-3的WB,摸一抗,二抗浓度,做了好几个月也没出结果,一抗是Santa的,技术应该是没什么问题,现在可以把 内参显得很漂亮,就是不出目的条带,强烈怀疑santa的抗体不稳定(在论坛上也听到sabta抗体不好用的声音),我们是90次,300多元钱的,建议xdjm,如果实在不出结果,应该考虑下抗体的稳定性,不要为省钱买太便宜的抗体,否则费时费力!

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同感!用进口分装的一抗,浪费了一个多月的时间!
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好,刚开始做WB,先开始跑内参,开始没有条带出来,最近两次做出来均在action位置出现3-4个条带,一条一条的,
背景很干净,我是从组织提的全蛋白,上样量150ug,90v,110v电泳,300mA 70分钟湿转,5%脱脂奶粉室温封闭2小时,
一抗 1:1000TBST稀释4°C孵过夜,国产二抗1:1000TBST稀释室温2+小时。都是TBST洗膜3*10min。DAB液显色,
是我的action抗体有问题吗?还有想问一下:一抗和二抗可以回收4℃保存继续用吗?十分感谢,救救我吧,
做了半个月内参都没做出来的。都快疯了

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1、上样量太大
2、有图片吗
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您好,老师
兔二抗用1:50000做某个指标可以做出很好的结果,有条带无背景。换做另外一个指标,仍然是用兔二抗,结果ECL发光时整张膜发亮,这样肯定是曝不出光,是不是应该降低一抗的浓度?需要针对这个指标调整二抗的浓度吗?

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不需要调整二抗浓度
调整一抗的试试
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谢谢老师的回复,我们实验室所用的抗兔与抗鼠的二抗对WB的推荐浓度都是1:10000——1:200000,我不大明白怎样确定二抗的稀释度。
什么是点杂交?
还有如果先确定二抗的稀释度的话,一抗浓度应该怎样的?或者是我理解错了,您说的意思是:确定二抗稀释度的过程不需要转膜、封闭、加一抗的前步骤?
这个暑假憋在实验室很痛苦,像没头苍蝇似的在调浓度,看到您的这个帖子,像是抓到了救命稻草似的。谢谢您,望指教。

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把二抗按照不同的稀释度稀释好后
取1ul点在NC膜上
等干燥后
加ECL发光,曝光
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是在wb最后一步显影的时候,请问是怎么回事呢?(我附了一张显影的图片)

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这是彩色图片吗?
还是CCD照相的结果?
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最近做WB 遇到以下几个问题,望老师指点:
1.浓缩胶花了45min不凝(有一个槽的胶没了,其他槽都凝的很好,所以损失了一个槽)
2。显影出来结果有两个条带是变形的,其他都好
3.显影出来有白色片状斑块,估计是气泡所致,如何可以避免
4。有张膜显影时间很长,也没将全部条带显出来,只有部分,是上样量是15微克,是上样量太少了吗?还是抗体浓度太小了?
5。只做标准曲线调蛋白时,曲线老是个指数曲线,弯的,浓度时0,1,2,4,8,16,这样回归系数太小了,怎么样改善呢,或者这样下去对所调蛋白浓度一致性的影响大不大,可以这么做吗?
多谢!

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调整APS与TEMED的量(最大的可能性是APS失效了,重新配制)
有两个条带变形:应该是胶孔的问题
气泡要赶干净,没有别的方法
浓度0,1,2,。。。。这个浓度单位是多少?
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最近准备跑WB,看了一些文献,发现一些问题请请教。
为什么说两种种属来源不同的抗体可以同时孵育?另外请看下图

文章中2个不同种属来源的一抗是混在一起同时孵育的,那么他们2抗之间用了“或”这个字眼是什么意思?也是同时孵育?还是其他什么方法?

请指教。

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这个只是论文中实验方法的描述
不够详细吧
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你好,我想 请教一下能否用牛奶封闭过夜啊?我用牛奶封闭过夜后,曝光的时候发现孵育了发光液后膜上没有一点发光的地方,不知道是不是因为牛奶封闭的太死了,可以加QQ2545597724聊吗

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你做什么指标?
内参?
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调整APS与TEMED的量(最大的可能性是APS失效了,重新配制)
有两个条带变形:应该是胶孔的问题
气泡要赶干净,没有别的方法
浓度0,1,2,。。。。这个浓度单位是多少?

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谢谢您的答复!

1.昨天又做了,胶没出现那种状况,都凝的很好,老师分析的很有道理,我以后注意点量的问题。

2.两个条带变形,看图,如下:(这是GAPDH图)

3.通常PVDF用甲醇激活要激活多久啊,激活后需要再用转膜液洗吗?不知道气泡多和这有没有关系。

4.单位是微克/微升
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