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标题:[求助]转染后细胞都死了是怎么回事啊?

我佛慈悲[使用道具]
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[求助]转染后细胞都死了是怎么回事啊?



昨天做了一次转染,用的是英俊的脂质体2000转染试剂(刚买不到3个月),转染成纤维细胞(通过原代分离培养的,但是不是很纯有其他细胞),6孔板细胞量,转EGFP质粒(质粒没有问题,因为在别的细胞转染试过好用),按照说明书的比例质粒加4微克,转染试剂加10微升,转染复合物共500微升,孵育20分钟后,加到用PBS清洗两遍的6孔板中,补加500微升无血清和双抗的DMEM培养基,37°二氧化碳培养箱培养,5小时换液时发现:
许多细胞出现严重的凋亡现象,细胞呈扁平放射状,放射的突出有分叉,像树枝一样,看样子像是死了!
不知道细胞还能不能活过来,所以5小时换液换成含血清不含双抗的DMEM培养基过夜培养,结果今天早上发现细胞全死了!太伤心了!
以前也做过这种转染,有时也会出现细胞死的很严重的现象,有时就很好,曾经尝试在4-6小时转染的过程中加少量的血清,但作用好像不大!
是不是我的细胞有问题呢?请各位高手帮我分析一下原因呗谢谢了!
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可能细胞有差异吧,我也用lip2000转染的,5小时以后换不含抗生素的DMEM,细胞状态很好,元代细胞比较娇嫩
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66+77[使用道具]
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回复 #2 66+77 的帖子

你用的也是lip2000的比例转染的吗?我想问下转染细胞效率怎么样呢?我以前转染成功过,但是效率不是很高!谢谢!
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xueyouzhang[使用道具]
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我用第三代的成纤维细胞转染,也遇到同样的问题,还没找到原因。请大家帮忙分析分析,谢谢拉
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ROSE李[使用道具]
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好像lipo的说明书中不建议使用含抗生素的培养液。
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ROSE李[使用道具]
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专门找了一下,是不能用含抗生素的培养液,会导致细胞死亡。我现在是连正常培养的细胞都没有加,注意无菌操作就行了。要求转染过程中无血清、无抗生素。


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kewanqi2011[使用道具]
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不知道转入的基因是否会引起细胞调亡。
另外建议降低lipfectamin的浓度试试看,我们研究室很多人都不用说明书推荐的用量的,经常是推荐用量的1/4。
用量高,细胞毒性也高,细胞容易死。我也遇到过此类情况,用量改为1/4就ok啦。
抗生素我们倒是不太在意,转染的时候不加,但是5个小时换液后培养一直都加的,没啥关系。
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kewanqi2011[使用道具]
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我转过的成纤维细胞是3T3,不知道是不是我的目的基因问题,用说明书用量细胞会死,但是用1/4的话完全顺利进行。
还有转染时的细胞密度不要太低,否则会引起细胞死亡。
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abc816[使用道具]
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兄弟,在转染之前最好是用无抗生素的培养基培养12小时,然后再进行转染。
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我佛慈悲[使用道具]
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谢谢大家的回答,在此十分感谢!
我看到有的帖子说原代的细胞对血清很敏感,是不是转染过程中(尤其是4-6小时)会造成细胞死亡呢!我以前用过PK15细胞做转染对照试验,一个在4-6小时转染过程中加血清,一个不加,结果发现细胞都很好,而且转染效率也没有差别,至少证明在这种细胞中加不加血清不会影响转染效率,但对于原代的成纤维细胞,我就不知道应不应该在转染过程中加血清了!
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