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标题:[求助]破骨细胞

kuaizige[使用道具]
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[求助]破骨细胞




细胞培养与分组 选用健康6周龄Wistar大鼠3-4只,腹腔注射肝素钠3000u/只,30分钟后颈椎脱臼处死,用75%的乙醇浸泡10分钟,相对无菌条件下剥离双下肢皮肤、肌肉组织,取出并分离双侧股骨及胫骨,置入PBS缓冲液中清洗3次,在无菌超净工作台用咬骨钳去其两端,用12号针头5ml注射器抽取内含15%胎牛血清及20μg/ml M-CSF的α-MEM培养液5ml,冲洗骨髓腔至其内表面颜色发白;反复吹打冲洗液制备细胞悬液。上述细胞悬液按1:1比例缓慢铺于淋巴细胞分离液(Ficoll,比重1.077±0.002)上,1000r/min离心5min,取中间单个核细胞层加入等量无血清α-MEM,1000r/min离心5min,弃上清后以含15%胎牛血清及20μg/ml M-CSF的α-MEM培养液重悬细胞,调整细胞密度为1×104/ml,接种于25cm2培养瓶中,37℃、5%CO2,饱和湿度条件下孵育2-3小时;收集上述孵育后的非黏附细胞,换用还15%的胎牛血清、M-CSF 20μg/ml、重组RANKL 50ng/ml、HEPES 10Mm、青霉素100IU/ml、链霉素100μg/ml的α-MEM培养液重悬细胞,调整细胞密度为1×106/ml,均匀接种于6孔培养板(3ml/孔)及预置骨片

以上我是按照文献上的实验步骤进行的,

但不知道“收集上述孵育后的非黏附细胞”中的“非黏附细胞”是指悬浮细胞吗?
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101010[使用道具]
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我感觉“非黏附细胞”指的就是培养2-3小时后那些非贴壁的细胞,贴壁的是一些干细胞或者纤维细胞之类的。不明白你所指的"悬浮细胞"是什么?
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用75%的乙醇浸泡10分钟, 这个步骤可以省略。
我们实验室,省略了这个步骤以后,细胞状态好多了。
另外,腹腔注射肝素钠3000u/只,我们从来没加过。

过程是 :
1。 处死 4~6周小鼠。
2。 相对无菌条件下剥离双下肢皮肤、肌肉组织,取出并分离双侧股骨及胫骨,置入PBS
(PBS with 5% penicillin)
3. 1ml 注射器,10% FBS a-MEM (m-CSF free). 这个步骤不需要加 m-CSF的.
4。冲洗骨髓腔至其内表面颜色发白;反复吹打冲洗液制备细胞悬液。
5。1000r/min离心5min
6。Gel solution : PBS = 3:1 反复吹打细胞(为的是破掉占骨髓细胞绝大多数的红细胞),肉眼观察,发现变色为止。
7。1000r/min离心5min
8。加入 10ml/2 mouse 的 比例加入 含5ng/mlM-CSF的10%FBS的 a-MEM. 吹打细胞。
9. 用70um 的 filter 过滤细胞。(目的是为了除去比较大的杂物及细胞)
10。 37℃、5%CO2 12 - 18小时。
11。 将上清夜,以 3plete/mouse的比例 重新接种细胞(30ng/mlM-CSF的10%FBS的 a-MEM)
12。37℃、5%CO2 3天。
13。 3天后,harvest.

11步骤,取上清的原因,楼上已经说明了,是为了除去贴壁细胞。
你以后,可能会慢慢明白,其实主要是为了分离 成骨细胞(osteoblast).
因为,再 M-CSF 的刺激下,绝大多数 的干细胞都会 往破骨细胞方向发展,,这个过程当中,主要的杂质细胞,一般都是 成骨细胞。

做 osteoclast试验,时间长,步骤多,建立体系不是很容易。

希望,克服万难,早日成功!!
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utt0989[使用道具]
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你们居然不用酒精浸泡,不会污染吗?佩服!请问你们有没有人做过骨髓基质干细胞的成骨诱导分化?
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TNT[使用道具]
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你们居然不用酒精浸泡,不会污染吗?佩服!请问你们有没有人做过骨髓基质干细胞的成骨诱导分化?

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因为 PBS中 加了penicillin 抗生素,,酒精浸泡,不是不行。用抗生素代替酒精,是我们实验室博后的方法,现在他已经去美国了。
另外,用骨髓基质干细胞诱导成骨细胞,我们没人做,我们的 成骨细胞,都是从 刚出生1~2天的幼鼠头盖骨中 提出来的。。这个方法也是现在论文上经常提到的啊!!
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utt0989[使用道具]
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奥,这种方法确实挺新鲜的!佩服!取新生大鼠头盖骨原代成骨细胞我们也做得!我们现在不是要得到成骨细胞!是要将干细胞诱导为成骨细胞,因为在诱导过程中遇到点问题,所以问下你们是不是也做,以便交流一下!
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wsll[使用道具]
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酒精浸泡10分钟的问题:这个步骤没有实际意义,10分钟不足以杀死所有微生物,只要取出组织后用PBS冲洗干净,断开髓腔后严格无菌操作,离心时严格操作,取材这一步就不会污染,我是做干细胞和软骨细胞的,从来都没有用过这一步。
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奥,这种方法确实挺新鲜的!佩服!取新生大鼠头盖骨原代成骨细胞我们也做得!我们现在不是要得到成骨细胞!是要将干细胞诱导为成骨细胞,因为在诱导过程中遇到点问题,所以问下你们是不是也做,以便交流一下!

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这个试验,我们当时曾经做过。
利用 bone marrow stromal cell(BMSC)也就是, 我上面提到的第10步,培养18小时以后,BMM实验不是取上清么,BMSC 细胞是贴壁生长的。这个时候,我们加了 osteogenic meda.
media 的 出处:
Metallothionein protects bone marrow stroma cells against hydrogen peroxide-induced inhibition of osteoblastic differentiation. cell biology Int 28.2004.

刚开始的细胞量,特别少。所以,我们从 48well --> 12 well --> 6well --> 60ㅠ的方法,扩增细胞。最后用 ALP(Alkaline phosphatase) staining 来确定Osteoblast的纯度。

太繁琐,培养时间长,易发生污染现象。还有,认知度没有直接从头盖骨体的方法好。
所以,之后也就没人做了。

不知道对你有没有帮助!
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我不是为了得到成骨细胞,而是要看这个诱导过程,还要看其他药物对基质干细胞向成骨细胞分化的影响,现在我在基质干细胞内加入成骨诱导剂之后第十天,细胞就开始脱壁漂浮,两星期左右几乎没有存活的细胞了,全都脱壁死亡。我都是按着文献来了,可是不知道为什么一直出现这种脱壁情况,因为一般要诱导21天,收集RNA,到14天细胞就全死了,所以我无法做下去,也找不到原因,很是着急啊!还是要谢谢你
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utt0989[使用道具]
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诱导过程,你用的是 osteomedia + BMP 么?? 2者好像是 缺一不可阿~
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