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标题:[讨论帖]Transwell技术答疑

园丁##[使用道具]
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[讨论帖]Transwell技术答疑



Transwell技术作为细胞生物学的常用实验方法,在生物医学研究领域有着极其广泛的应用。

虽然只是一个带有通透膜的小杯,transwell却在免疫、药理、肿瘤等多方面的研究中起到不可替代的作用,充分了解transwell的作用并且正确使用经常决定着接下来实验的成败。

本人有多年的transwell技术经验,特开transwell技术答疑园地,对群友们提出的问题给予解答,希望能够和大家相互学习,共同进步。

任何与transwell有关的实验问题和产品问题,大家尽管在此提出,本人尽力解答,也欢迎群友们来参加讨论。

再次感谢大家。
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redbutterfly[使用道具]
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一个问题:有介绍说在包被滤膜时,需要用DMEM或者其他的无血清培养基稀释Matrigel胶,如从10mg/ml to 5mg/ml。这一步是必须的吗? 可以将胶4°C 溶成液态后直接就包被吗?
另外,所谓的 水化滤膜是不是在接种细胞前进行? 谢谢!
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园丁##[使用道具]
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回复 #2 redbutterfly 的帖子

当我们进行肿瘤细胞侵袭试验的时候,常常要把细胞种在上腔,下腔中则加入血清或者一些相应的趋化因子,同时,在通透膜上腔面包被上基质胶(Matrigel胶)模拟细胞外基质。这样,肿瘤细胞受到下腔物质趋化而向下运动,必须先分泌基质金属蛋白酶(MMPs)来降解Matrigel胶,然后透过通透膜,进入下腔。

当肿瘤细胞分泌的MMPs,Matrigel胶的浓度和厚度,下腔的趋化因子强度达到一种适合的关系的时候,借助于transwell的侵袭试验是便于操作和评价的。

换言之,如果Matrigel胶浓度太大或者涂得太厚,则不容易评价肿瘤细胞的侵袭作用。因此,一般要对Matrigel胶做一定比例的稀释,具体浓度应当考虑您所用的肿瘤细胞分泌的MMPs的情况和下腔设置的趋化因子的情况后确定。

水化滤膜(通透膜)应当在种细胞前进行。
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glass[使用道具]
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我将用Corning的Transwell的培养板,培养细胞时是细胞贴壁在中间的虑漠上,我的目的蛋白大约为25KDa,不知选择虑膜孔径为多大合适,如太大了,会将细胞漏下去,太小了细胞生产的蛋白通不过滤膜,到不了下层?请问谁有这方面的经验,希望能够分享一下!细胞为PK15细胞,蛋白为牛生长激素,请问细胞直径一般为多大,像分子量约为25KDa的蛋白折叠后直径大约为多少微米?
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5
 

不会吧,蛋白很小很小,到不了微米的级别吧?一般做趋化因子在细胞间相互作用的,可以用0.4um孔径的,如果做细胞迁移的,用3um或8um的。不用考虑蛋白跑不过来:)
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c86v[使用道具]
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请教transwell通透膜种类选择的问题。
我用于细胞共培养,检测细胞因子对下层细胞的影响,我选择了0.4um的膜。因为上层细胞是造血细胞(悬浮),似乎对细胞的粘附要求不高。请问这种情况膜材料的选择是PET,还是PC更好一些?如果是贴壁的细胞,情况又是如何呢?感谢解惑!
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回复 #6 c86v 的帖子

正如版主所说,一般不认为transwell的滤膜会限制蛋白运动。如果是为了进行共培养,多选用0.4微米孔径,这样分泌的蛋白可以透过,而细胞不会漏下去。至于细胞直径,目前还没有报道有真核生物的完整细胞小于1微米。
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园丁##[使用道具]
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请教transwell通透膜种类选择的问题。
我用于细胞共培养,检测细胞因子对下层细胞的影响,我选择了0.4um的膜。因为上层细胞是造血细胞(悬浮),似乎对细胞的粘附要求不高。请问这种情况膜材料的选择是PET,还是PC更好一些?如果是贴壁的细胞,情况又是如何呢?感谢解惑!

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聚酯(PET)Transwell-的特点是其滤膜在显微镜下呈透明状态,这样细胞在相差显微镜下更易观察,可以估计细胞的生长状态。
而聚碳酯(PC)Transwell的膜则呈半透明状态,不容易在镜下观察细胞。

如果是用于共培养目的,您选0.4微米孔径是恰当的,至于选PET还是PC,还是要根据您的实验目的来定。

如果您在上层种上贴壁细胞,也是可以的。个人曾经这样干过,上层和下层都种了贴壁细胞,我的实验目的希望能够同时观察两种细胞的生长情况,就选用了透明的PET膜。观察细胞的时候可以调节显微镜的焦距分别观察上层和下层的细胞状态。
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我想请教一下,在小鼠干细胞迁移实验中,一般选择多大孔径的膜,5ul还是8ul?观察的时间一般是几个小时?4hrs还是更长一些?如果加入的是LSK细胞(干祖细胞),上孔的细胞数多少比较合适呢?谢谢。
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求助班主:我近期在用traswell做一种细胞对另一种细胞迁移的影响实验,我用的是Corning 8um的膜,可染色方面出了问题。 前期我一直用苏木素染色方法。 具体步骤是:用棉签擦去滤膜上室面的细胞,然后将Transwell insert置入95%乙醇中固定10min,苏木素染色5~10min,l%盐酸酒精脱色数秒,流水冲洗,使细胞核染蓝,取下滤膜,下室面朝上平铺于载玻片上,显微镜下照相并计数迁移到滤膜下室面的SMC,每个样本计数5个高倍视野(400HPF)的细胞数取平均值,测定SMC迁移率。 但染色后发现细胞颜色非常浅(显微镜怎么调都看不清楚),几乎看不见颜色,我用同样的方法染色细胞爬片,发现效果很好。不知问题出在哪地方了? 附图:。。。
最近我又换了结晶紫的染色方法。首先结晶紫的配制方法:称0.1g 结晶紫先加几毫升酒精溶1下 然后溶解到100ml蒸馏水中,避光备用(不知道是不是我配制的方法不对)。 染色 步骤:细胞用甲醛室温固定30分钟,清水冲洗,膜风干。结晶紫染色10分钟,用清水洗3遍以上,后在显微镜下观察细胞,记数。 但我发现染色后整个膜都是紫色的,用水根本洗不掉(洗的太猛又怕把细胞洗掉),上显微镜也观察不到细胞了,整个界面全是紫色的。不知问题出在哪?很是焦急?恳请指导
小弟还想请教一下关于迁移率的计算方法? 万分感谢


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2012-4-7 09:19
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