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标题:[求助]做神经细胞原代培养的群友,看看这是什么东西

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[求助]做神经细胞原代培养的群友,看看这是什么东西




各位群友,我是用以下方法做的:
1.头天晚上用0.01mg/ml的多赖铺在dish中。每皿加1ml多赖,静置过夜,第二天吸出多赖,放入细胞培养箱中烘干,在最后接种时取出。
3.取一日龄SD鼠,用75%酒精消毒。
4.用剪刀剪下鼠头,从耳后缘处剪起直到眼眶后缘两侧都剪过后,用镊子将其头皮和头盖骨一起掀开,暴露整个脑组织。
5.用镊子整个的取出脑组织,置于加好解剖液的35mm皿中,剥离脑皮层,置于另一加好解剖液的皿中。
6.取3ml胰酶于皿中,放入细胞培养箱里使胰酶温度孵育至37℃(10-15min)
7.等所有新生鼠的海马全部分离出后,再小心剔除脑膜(从红色的血管来判断脑膜是否已剥离),将已剔除脑膜的海马放入另一个盛有解剖液的皿中。
8.使用玻璃注射器芯轻轻研磨脑组织至较小的组织块(约2mm左右,大小不等)。
9.使用滴管轻轻吸出组织,加入到盛有胰酶的皿中消化15min。消化中可以晃动1次,使海马组织可与消化液充分接触。
10.在此15分钟内准备下步工作,取出四个15ml的离心管,其中三个加入3ml种植液,取出三个吸管(一细两粗),等。
11.15分钟后取出,消化理想状态是碎片抱团抽丝。用吸管吸出碎片置盛有种植液的管中进行第一次洗涤,静置3-5min后(理想状态应会沉下去),弃去上清,下层用粗头吸管吸出置另一盛有种植液的管中进行第二次洗涤,静置3-5min,弃上清,下层再用粗头吸管吸出置于第三支盛有种植液的管中,先用粗头吸管轻轻吹打20次左右,再用细头吸管轻轻吹打20次。
12.离心,1000rpm,30秒(从1000转速时开始计时)。
13.(新吸管)取上清置第四支管中,在第三支管中再加2ml左右种植液使沉淀重悬,再用细头吸管轻轻吹打20次左右,离心,1000rpm,30秒(从1000转速时开始计时)。
14.取上清置第四支管中,取出10ul(充分混匀后)含有海马细胞的液体用其他液体(双用种植液)稀释十倍,取10ul稀释液计数(或不用稀释直接计数)。
15.按每皿100万细胞种植。(皿是提前铺好多赖的)。
16.四个小时后全量换饲养液。
17.24小时后半量换neuronbasal。
以前用这个方法做出来过,可是这次4小时候换液发现细胞贴壁的不多,有很多透光性很强的细胞,第2天的时候还是这样,现在已经是第4天了,已经全是这样的东西了,怀疑是不是细胞,请各位给与指点,谢谢啦!


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摸条件已经快半年了,至今没有很好的结果,以前做出来过,可是细胞聚集的很厉害,没法进行下一步,以为是胰酶消化的不好,这次换了一家公司的胰酶,含EDTA的,怎么就搞出这样的结果,真是郁闷,请大家多多帮忙啊!
还有以前也见到过这样的东西,感觉只要神经元分的少,它就多。
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发张以前的,请大家参考


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1.图1中全是死细胞。
2.图2中只有几个神经元,混有很多的胶质细胞,细胞不纯。
建议:使用孕16-18天的胎鼠进行取材。
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多聚赖氨酸浓度太低了,养神经元怎么也得100ug/ml,你这个10ug/ml不行的。

第一张图中都是死细胞。

第二张图中的细胞状态也不好。

细胞聚集我以前经常碰到,后来发现就是多聚赖氨酸的关系,换了进口的就好了。不过神经元确实比较爱聚团。多聚赖氨酸包被是非常非常重要的!
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谢谢各位了,明天重新做一次,看看怎么样。我的多赖是sigma的。
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摸条件已经快半年了,至今没有很好的结果,以前做出来过,可是细胞聚集的很厉害,没法进行下一步,以为是胰酶消化的不好,这次换了一家公司的胰酶,含EDTA的,怎么就搞出这样的结果,真是郁闷,请大家多多帮忙啊!
还有以前也见到过这样的东西,感觉只要神经元分的少,它就多。

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而且你做原代为什么要用EDTA呢,这个裂解的作用对神经元来说太强了,一般是在传代的时候消化细胞用的,原代神经元一般就用0.125%的胰酶就可以了,可以加一些DNA酶但是不要加EDTA。
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谢谢楼上的各位。我现在用0.25%的胰酶(含EDTA)消化30分钟,细胞状态挺好,可以养10天左右。以前细胞死亡的原因可能与培养基的pH值有关,我买的DMEM放了半年多,时间有点长了,pH>8.0,后来换了培养基,细胞状态就挺好的。
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