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标题:[求助]封闭液的封闭原理及其选择

redbutterfly[使用道具]
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[求助]封闭液的封闭原理及其选择



最近做细胞免疫荧光标记,发现非特异标记很多,对照组(不加一抗)和正常组(加一抗二抗)基本没什么区别。疑似封闭液出了问题。是否要用羊血清封闭?但是很多人都有用到BSA;还是BSA浓度太小了?上网查,众说纷纭。我的方法如下
1、4%冷多聚甲醛4度固定20min,PBS洗三遍,每次5min
2、0.2%Triton透化处理20min,室温,PBS洗三遍,每次5min
3、0.5%的BSA(牛血清白蛋白)20min封闭,室温。不洗,倾倒掉多于液体。(以上在24孔板中操作)
取一载玻片,把爬片正置在载玻片上进行一下操作。可避免因孔板孔太大太大而浪费抗体。
4、一抗(兔抗鼠。1:100)孵育过夜4度,然后取出,正置于孔板中,PBS洗三遍,每次5min,取出,把爬片正置在一干燥载玻片上进行以下操作。
5、二抗(羊抗兔。1:160)室温1小时,注意避光(可放置在饭盒中),在二抗孵育40min是加Hoechst33258染色液染核20min,),然后取出正置于培养皿中,PBS洗三遍,每次5min
6、蒸馏水洗掉PBS,60%缓冲甘油封片
7、 倒扣于载玻片上或是大的盖玻片上,镜下观察。
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zzzz[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 redbutterfly 于 2012-5-7 15:50 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')


最近做细胞免疫荧光标记,发现非特异标记很多,对照组(不加一抗)和正常组(加一抗二抗)基本没什么区别。疑似封闭液出了问题。是否要用羊血清封闭?但是很多人都有用到BSA;还是BSA浓度太小了?上网查,众说纷纭。我的方法如下
1、4% ...

标记方法的问题
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回复 #1 redbutterfly 的帖子

试试延长封闭时间,调低二抗浓度。
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hot_hot_hot[使用道具]
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好象大多是用血清封闭(通常用小牛血清),为什么要用牛血清白蛋白?
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redbutterfly[使用道具]
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谢谢楼上各位的意见,如果知道一些封闭的原理请告知或告知一些链接。
另外2楼说的“标记方法的问题”是什么意思?能否明确指明。谢谢
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zzzz[使用道具]
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对照组和正常组没有区别,那就可能是标记得方法有问题,还有我看到的的是90%的甘油封片
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redbutterfly[使用道具]
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楼上说的标记方法问题是不是指一抗二抗选择的问题?谢谢!
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zzzz[使用道具]
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回复 #7 redbutterfly 的帖子

二抗是没有问题的,你用的是什么细胞,是鼠的吗?不是的话,就有问题啦。不是的话,一抗怎么结合上去?
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hot_hot_hot[使用道具]
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hcworld.com里面有比较复杂的配方,我用过,效果很好。
Normal Goat Serum Blocking Solution:

2% goat serum (blocking)

1%BSA (stabilizer)

0.1% cold fish skin gelatin (blocking)

0.1% Triton X-100 (penetration enhancer)

0.05% Tween 20 (detergent and surface tension reducer)

0.05% sodium azide (preservative)

0.01M PBS, pH 7.2

Mix well and store at 4 ºC.
通常我配500ml的不含血清的封闭液,高温灭菌之后4度保存。用的时候,临时加入相应浓度的血清。我的原则是如果你的二抗是羊抗兔,封闭液里就要加羊血清,如果是驴抗兔,封闭液里就要加驴血清。
封闭时间30min, 室温。一抗,二抗都用封闭液来稀释。你可以试着换换。洗的时候,我用的是PBST( 0.02% Tween 20).

关于对照的问题,我认为你应该用isotype control 而不是用 省略一抗来做对照。
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redbutterfly[使用道具]
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谢谢楼上。我换了山羊血清做封闭液,用4%多聚甲醛固定。一抗用封闭液稀释。二抗用pbs。做出来比之前的好多了。但对照组还是有一些非特异结合,是不是二抗也要封闭液稀释啊?下一步我准备把二抗稀释一下。
1%BSA (stabilizer)什么作用?
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