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标题:[求助]关于接种六孔板、提蛋白等等的一些疑惑!

huifeng0516[使用道具]
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[求助]关于接种六孔板、提蛋白等等的一些疑惑!




各位群友:
最近测酶活性,但觉问题一大堆!
1、接种六孔板时如何尽量让细胞接种均匀?
2、给细胞染毒时我听说有两种方案,比如说染三天毒
一、先接种20%-30%,三天之后收获时刚好长满
二、一开始就接种70%-80%,然后以3%或者5%血清,这样尽量不 让 细胞分裂增值,三天之后收获
试问,哪个更可行呢?
3、提总蛋白时有人先把细胞吹下来然后裂解,有人直接把裂解液加进板子,哪个更好些?可否提供两种方案的具体步骤?
4、裂解后一定会出现粘稠物质吗?
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铜雀[使用道具]
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1、接种六孔板时如何尽量让细胞接种均匀?
首先接种量要一致,然后加到板子中后用十字交叉法晃动平板摇匀,再生长12-24h,让都长到89-90%左右,一般问题不大
2、给细胞染毒时我听说有两种方案,比如说染三天毒
一、先接种20%-30%,三天之后收获时刚好长满
二、一开始就接种70%-80%,然后以3%或者5%血清,这样尽量不 让 细胞分裂增值,三天之后收获
试问,哪个更可行呢?这个不懂,但是个人认为如果确定不了,可先做次预实验比较一下,当然可能病毒不那么方便,看情况吧

3、提总蛋白时有人先把细胞吹下来然后裂解,有人直接把裂解液加进板子,哪个更好些?可否提供两种方案的具体步骤?
各有利弊:
消化下来再裂解,有可能有酶的污染,使蛋白不稳定,但是可以将蛋白浓度弄得比较大;直接加进板子里裂解不会有外源污染,但是蛋白浓度会比较固定,如果目的蛋白量很低就不适合了。至于具体步骤,要根据楼主所用的试剂不同不太一样,最好使用公司试剂盒,根据说明书来(省心。。。不过费钱。。。)
4、裂解后一定会出现粘稠物质吗?
是指基因组吗?有许多方法可以去除的,比如加入DNase或者超声等等
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huifeng0516[使用道具]
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首先接种量要一致,然后加到板子中后用十字交叉法晃动平板摇匀,
3、提总蛋白时有人先把细胞吹下来然后裂解,有人直接把裂解液加进板子,哪个更好些?可否提供两种方案的具体步骤?
各有利弊:
至于具体步骤,要根据楼主所用的试剂不同不太一样,最好使用公司试剂盒,根据说明书来(省心。。。不过费钱。。。)

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请问群友什么叫做十字交叉法呢?如果要摇匀,接种后我把培养板放到摇床去摇可以吗?
还有试剂盒,群友你用过吗?它们叫什么名字?目的都是什么?
烦请多多指点。谢谢你!
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铜雀[使用道具]
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十字交叉就是将板子贴着桌子,先前后晃再左右,以十字的形式晃动,将细胞晃匀,防止成簇。摇床力量太大了,容易染菌,不推荐

试剂盒我用过RIPA裂解液,那个公司的忘了,主要是裂解液,自己再加点PMSF就行了
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greenbee[使用道具]
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请问战友什么叫做十字交叉法呢?如果要摇匀,接种后我把培养板放到摇床去摇可以吗?
还有试剂盒,战友你用过吗?它们叫什么名字?目的都是什么?
烦请多多指点。谢谢你!

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1。十字交叉,就是6孔板贴着桌面,前后左右晃晃,目的是使细胞分布均匀,摇床。。。这个。。。没必要,细胞要贴壁生长,一直晃怎么行。。。

2。我们用的盒子是Pierce的,提蛋白测浓度的,具体货号忘记了,网上搜下应该很好找,目的嘛,当然是提取细胞总蛋白测浓度了;

3。我们都是直接把裂解液加到板子里,避免先用胰酶消化引入蛋白酶,使蛋白降解。。。
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huifeng0516[使用道具]
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多谢各位!
受益颇多!
还有一问:裂解液似乎有很多配制方案,就提取总蛋白来讲会有不同效果吗?
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huifeng0516[使用道具]
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RIPA裂解缓冲液常用配方:(Tris-HCl, 50 mmol/L, pH 7.5;NaCl, 150 mmol/L;NP-40, 1%;脱氧胆酸钠, 0.5%;SDS, 0.1%;EDTA, 1 mmol/L;PMSF, 1 mmol/L;Leupeptin, 2 μg/ml)

只使用过这一种裂解液,效果不错,其他没使过,不好说效果有没不同,感觉成分应该差不多,可能就差在用的是不同的蛋白酶抑制剂吧。
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一叶[使用道具]
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接种六孔板时如何尽量让细胞接种均匀?

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可以试试先在离心管里配好需要的细胞浓度,再加到孔里,这样稍微晃一晃就行了,但切记不可旋转
但其实如果十字法用的多了,也很方便

用摇床的方法实在让人那个汗 = =!!!
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一叶[使用道具]
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提总蛋白时有人先把细胞吹下来然后裂解,有人直接把裂解液加进板子,哪个更好些?可否提供两种方案的具体步骤?

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我用的是三去污裂解液,今天细看后才发现跟RIPA配方差不多。。。
三去污裂解液:
Tris-Cl(pH=8.0) 50mM
NaCl 150mM
NaN3 0.02%
SDS 0.1%
NP-40 1%
脱氧胆酸钠 0.5%
EDTA 1mM

具体方法:将35mm培养皿贴壁超过90%以上,状态良好的细胞置于冰上,弃去细胞培养基,用冰预冷的PBS洗两次,将残留的PBS尽量吸干,再加入30-40μL三去污细胞裂解液(含1mM PMSF),冰上放置30min,用枪头将细胞刮下,收集到1.5mlEP管中,4°C最高转速离心25min,收集上清,存放于-30°C。

关于加不加蛋白酶抑制剂的问题,我觉得跟你研究的蛋白是否容易降解有关。
其实裂解液里已有不少抑制蛋白酶活性物质存在。
象我正在研究的蛋白,并不需要加PMSF或什么蛋白酶抑制剂cocktail,也能顺利的完成实验。
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一叶[使用道具]
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裂解后一定会出现粘稠物质吗?

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我的细胞每次都会,通常会以最大转速度离心20-25min,取上清保存起来。不过要看你收集什么蛋白了,离心后的上清是细胞浆蛋白,细胞膜蛋白都沉淀下来,所以如果是研究细胞膜蛋白就不用离心了。
还有如果你的蛋白容易降解的话,也不能离心太久。
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