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标题:[求助]流式细胞仪细胞标本的制备

jkobn[使用道具]
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[求助]流式细胞仪细胞标本的制备



我目前在做细胞周期,使用流式细胞仪。但是流式细胞仪实验室老师告诉我说我的标本细胞太少,细胞没能做到但细胞悬液。我养的是乳腺癌细胞SKBR3,50ml培养瓶长满。细胞收集离心速度是1200rpm,PBS洗两次弃掉,将就离心管仲剩余PBS吹散细胞,然后将细胞悬液加入1ml已配好的75%乙醇中,再吹打若干次。请各位前辈指教一二,特别是细节方面。万分感谢!·
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yychen[使用道具]
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你试着将离心速度提高到1500转/分左右,如果上清液你倾倒没把握,就用吸管吸取上清液,这样可以尽量减少你在标本处理过程中损失细胞,最后处理完做成1ml左右细胞悬液后,还要再计数下细胞,如果不够可最后将两管细胞处理完毕混合为一管。
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50ml培养瓶长满至少够做3~4次周期了,离心转速在3000rpm以下都可以,看你的细胞了。但楼主乙醇固定方法有问题。应该在PBS洗涤后弃去上清(不要太干净),用残余液体悬起细胞,逐滴加入加-20度预冷的95%乙醇(其他浓度也可,总之终浓度大于75%)1~2ml,边加边振荡,否则细胞会聚集成团,就不是单细胞悬液了。固定后可保存一周左右(一周大概会损失一半左右的细胞)。实验前离心并PBS洗涤去除乙醇,加通透剂和RNA酶处理,PI染色上样。
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is2011[使用道具]
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我对流式样品处理也是摸索了很久,尝试了各种方法,

应该说楼主的方法也是可行的,细胞悬液不能超过100微升,这样可以注入到1ml预冷的固定液,我用的细胞比较多,就把细胞重悬浮于500微升PBS,注入5ml预冷固定液。这个方法的好处是比较快,细胞也不会聚集成团。把细胞注入固定液后就不必再吹打了,4度固定至少30分钟即可。

楼上说的逐滴加入固定液的方法我也试过,边加边震荡,就是有时候细胞多了觉得比较费时间。不管是那种方法,都保证细胞悬液体积不要超过总体积10%。

我用的固定液一直是70%乙醇,还有乙醇和甘氨酸的配方(7体积无水乙醇和3体积50mM glycine,pH2.0),和楼上以及楼主说的75-95%乙醇有点出入,不过固定的效果也还不错,关于这一点,希望能和楼上探讨一下。

关于离心速度,不同的细胞可能还不一样,在能离下来的情况下,尽量用更小些的离心速度,这样resuspend更容易也不易形成团块,如果觉得细胞量丢失很多,只好增加离心速度了。另外甩平头的离心机似乎效果比固定角度离心机好一些。
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jkobn[使用道具]
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看了各位的经验之谈,受益匪浅。我确实应该加大离心速度,因为细胞越洗越少,只是平时用的是900rpm所以只加大到了1200。但是关于市细胞加入固定液中,还是固定液加入细胞中?我后来咨询了做流式的老师,他反复强调是把细胞悬液加入固定液中,一边加,一边振荡。不过我不知道固定后还得在4度放半小时,一定得这样吗?我直接放-20度了。各位的方法我都试一试,谢谢指导,特别是细节方面的。谢谢
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is2011[使用道具]
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细胞固定后放-20度好像不行吧,没试过。
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is2011[使用道具]
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http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=12113979&sty=1
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jkobn[使用道具]
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哦,难道不能放-20度。我看文献上的有的写放-20度过夜什么的?我即将开展新一轮实验,请哪位高手指教一下,细胞固定后究竟放在什么条件?十分感谢!
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is2011[使用道具]
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我一直把固定好的细胞放在4度过夜,很多文献上都这样写,不过-20度的乙醇也不会结冰,至于是否影响流式结果,只能靠实验来验证了。
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