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标题:[求助]请教脐静脉内皮细胞的培养!

chuntian1983[使用道具]
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[求助]请教脐静脉内皮细胞的培养!


最近开始做脐静脉内皮细胞,圆子里有很多关于原代培养的方法,但是自己做起来还是觉得问题很多,主要是细胞收获少,生长很慢!想请教做过相关培养的同志!
我的方法如下:
1.收集健康孕妇无HBV、HIV 感染,无扭曲、打折、破损的新生儿新鲜脐带15~20 cm。 脐带于无菌、4℃的D-hanks液中,3-6h内操作。检查新生儿脐带有无破损及血肿,剪去破损及血肿部分;
2.在无菌烧杯中,结扎两端动脉。脐静脉两头接16#针头,针头接50 ml 注射器,抽取含青链霉素的温PBS 液冲洗至冲洗液呈无色清亮时,向脐静脉内灌注预温的消化液(0.1% I型胶原酶与0.25%胰酶按照1:1混合)至充盈;
3.置37 ℃水浴箱中消化12~15 min,每隔5min轻轻摇动一次,让消化酶与血管壁充分作用,消化完毕后用手轻轻揉搓脐静脉;
4.收集消化液,并用温PBS 液冲洗脐静脉两遍,冲洗液并入消化液中。消化液加入2ml胎牛血清于终止消化;
5.1000×g离心8-10min,弃上清,加内皮细胞培养基(M199含20 %FBS,VEGF 5 ng/ ml,青霉素100U/ml,链霉素100μg/ ml,L-谷氨酰胺2mmol /L,pH 7.2-7.4)打匀,调整细胞密度为1×105个/ml。接种于0.1%明胶包被的培养瓶中,置37℃、5%CO2 孵箱饱和湿度培养;
6.6h后换液,去除未贴壁的非内皮细胞,以后隔天换液。
7.细胞长满后,用不含Ca2+、Mg2+ 的PBS清洗,0. 25 %胰酶短暂消化后,分瓶传代培养。
不知道自己的方法哪里有问题,请做过培养的师兄师姐们不吝赐教
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jujuba[使用道具]
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2
 

你写的和里其他人的还有我自己做的总体来说差不多,就我的经验来说,即使自己认为每次条件都一样,但结果也不一样,多做几次。能接着做下一步的就接着做下一步。
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woshituzhu[使用道具]
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1.6h后换液时间不对,应24h以后。
2.配方中VEGF浓度低,提高10倍试试。
3.消化时间提高至25分钟。
4.不用调整浓度,以15cm长消化出的细胞为1瓶/5ml培养液。

改变以上后,应该没什么问题。
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zhezhe[使用道具]
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4
 
脐带从医院取回来后,应在4h内做完。
1. 用冷的PBS清洗脐带两遍,至静脉中没有血。
2. 先用止血钳夹住两边,再松开一边,将灌胃针头塞进去,注入温热的0.1%胰蛋白酶消化液(没有必要用胶原酶),使血管充盈(以不能打进溶液为准),再迅速拔掉针头,夹牢。
3. 将脐带放入盛有预热(37度)PBS的烧杯中,放入孵箱中,13min左右;
4. 用镊子将脐带从一遍到另一遍轻轻捏几遍,将一边的止血钳松开,将消化液转移到50ml的离心管中(含有血清的培养基),同时用冷的PBS清洗脐带两遍,合并液体。
5. 4度,1500rpm,15min;
6. 加入含生长因子的20% 血清M-199培养基。
7. 大约6h后,就可看见有细胞贴壁。
8. 24h后换液。

按我的操作,绝对没问题
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loli[使用道具]
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原代细胞本身生长的就很慢,内皮细胞一般也得24h贴壁完全,我做了几次猪的脐静脉的内皮细胞,结果也不好,就是同样的条件有的细胞就生长好,有的生长不好,确实应该多重复。你的培养基中考虑加入一下,肝素,胰岛素,氢化可的松吧。这个细胞不好养,也传不了几代
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chuntian1983[使用道具]
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非常感谢!
只有一个问题再想请教:消化下来的细胞是6h后换液?还是24h?
我在一些地方看到的是6h呢?
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tianmei001[使用道具]
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24h后换液
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zhezhe[使用道具]
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咱们培养的内皮细胞用八因子免疫组化的过程是什么?急需!!!我记得别人的是这样看对不对?1.在24孔板加500微升细胞悬液,细胞数1.5*10的5次方,细胞数融合80%。2.弃去培养液,以4%多聚甲醛固定30分钟。3.将固定液吸去。0.1MPBS冲洗3次,每次5分钟4.细胞封闭。以10%的FBS的0.01MPBS液封闭,37度30分钟。5.一抗孵育。(如何孵育?一抗如何配置?)6.反应后的小片由PBS洗三次,5分钟一次,终止反应。7.PBS稀释二抗(二抗如何稀释?)8.自来水冲洗9.显色(如何让显色?)
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newway[使用道具]
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献给大家一个很详细的HUVEC培养protocol

Protocol for primary cultures of HUVECs
I- Buffers and reagents
• Fetal calf serum (FCS) (Biosepra)
- Unfreeze the FCS
- Heat for 30 min. at + 56°C (decomplementation; bottle closed)
- Fractionate (25 ml) in sterile Falcon of 50 ml
- Freeze the fractions at – 20°C
• Phosphate Buffer Saline (PBS)
- 100 ml of PBS 10X without Ca++ and Mg++ (Life Technologies)
- 900 ml of distilled water
- 2 g of glucose
- Filtrate (0.22 μ), fractionate (50 ml) in sterile Falcon and freeze at –20 °C
• Collagenase (0.2 % in PBS)
- Dissolve 0.2 g of collagenase H from Clostridium Histolyticum (Roche) in 100 ml of PBS
- Mix during 10 min. in the dark (aluminium foil)
- Adjust the pH at 7.40 with NaOH 1N
- Filtrate (0.22 μ)
- Fractionate (10 ml) and freeze at –20°C
• Buffer for conservation and transport of umbilical cords
- PBS 50 ml
- Colimycine 1M 1 ml
- Penicilline G 1M 1 ml
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newway[使用道具]
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• Culture medium
M199 “stock”:
- M199 Earle 10X 100 ml
- Distilled water 900 ml
M199 “full”:
- Glutamine 0.2 M 1 ml
- HEPES 1 M 1.5 ml
- NaHCO3 7.5 % (w/v) 1.8 ml
- Penicilline/streptomycine (10000/10000) 1 ml
- FCS (heated at 56°C and centrifuged) 20 ml
- M199 “stock” up to 100 ml
Conservation at +4°C up to 1 week.
II- Cell culture
• The day before the manipulation:
- Coat the Petri dishes (35 mm; 7 dishes/cord) with 1 drop of fibronectin
- Bring at the maternity 3 recipients containing 50 ml of conservation buffer for cords
• The day of the manipulation:
- Fill up a recipient with ~ 500 ml of physiologic serum and maintain at 37 °C (“bain-marie”)
- Under the hood, prepare (for 1 cord):
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