小中大[求助]我养的骨髓基质细胞怎么了！
最近一直在培养骨髓基质细胞，前段时间养得挺好的，可以传到8,9代都没问题，增殖也很快，一瓶长满90%的细胞传三瓶，三天就长满了。最近养细胞却一直出现了一个很奇怪的现象，就是细胞传代后，第一天和第二天都还长得好好的，状态都不错，增殖情况也可以，可是到了第三天，还没有长满的细胞就会变成树枝状，分叉很多的那种，也基本不增殖了，如果这个时候传代的话，细胞虽然恢复了以前的形态，但是就再也不增殖了。如果不传代，到了第四，五天，细胞就会无一幸免的出现老化一样的症状，细胞碎裂，崩解，最后就全部脱离瓶底，死亡。我试着又做了4，5次原代培养，开始几代都培养的还可以，可是到了3，4代以后，就会逐渐出现这种症状。如果细胞传代的密度稍微低一点（大概50%）就算是第2,3代，也同样会出现这种情况。郁闷死了，我把照片贴在下面了，我还把我培养的大概条件给大家说一下，请大家帮我看看究竟是哪里出现了问题：
培养情况：
1. 原代培养的是新生大鼠(出生9-10天)，原代采用的培养基是a-MEM(Gibco)，15%胎牛血清(Gibco)，pH=7.0，采用的是全骨髓培养法，72小时后全量换液，换液后大约2-3天原代细胞基本长满了瓶底，然后传代，获得第一代细胞。这一部基本上没有出现过问题，细胞增殖的速度很快。
2. 传代培养的培养基是a-MEM(Gibco)，10%胎牛血清(Hiclone)，pH=7.0。传代的时候我感觉是密度不能太低，一般至少要达到60以上，否则细胞的增殖会受到影响。也不能让细胞长得太满了再传，感觉这样细胞就长老了。
3.0.25%胰蛋白酶37度消化2-3分钟
4.3-4天长满90%传代，第二天不换液（消化的时候胰酶去得比较干净，所以我一般不换液），直到传代，一直都不换液
我自己对照了以前的培养方法，步骤，培养基什么的都是一样的条件，猜想有可能的原因是：
1.pH值不合适，我现在的培养基pH是7.0。我以前用的是7.2，但是这个微小的差别会对细胞有这么大的影响吗？那么骨髓基质细胞培养的最适pH值究竟是多少呢？
2.细胞营养枯竭。但是我养过别的原代成纤维细胞，有的细胞6，7天不换液也就是不怎么增殖了，也不至于细胞发生这么大的形态变化，甚至最后死亡了。我也曾经试过在培养的第3天换液，但是细胞照样也会出现形态的改变，最终发展到死亡。
3.密度抑制。但是从图中你也能看到，这个密度最多只有70%-80%左右。我以前样的骨髓基质细胞，增殖到100%再传代也没有遇到过这样的问题。
恳请有过培养骨髓基质细胞经验的战友相助，我在这个问题上已经困扰一个多月了，试验一点进展也没有，都快对养原代细胞产生恐惧了！！！！帮帮我看看究竟是什么原因呀？
下面是培养骨髓基质细胞第三代的照片（形态，密度什么的都还算正常）：
