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标题:[求助]MTT试验中测IC50的意义和方法

hot_hot_hot[使用道具]
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[求助]MTT试验中测IC50的意义和方法



新手最艰难在做MTT,我一开始从设置100umol/L开始10倍稀释设立5个浓度,作出一组数据,量效关系还好,但是老板叫我测一下IC50,不太明白,希望高手给点拨和指点一下。谢谢!
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像做抗肿瘤IC50就是对癌细胞的清除率为50%时对应的样品浓度,而如果是清除某种特定物质时就是清除率为50%时对应的样品浓度,关键还是看你用什么做为指标,从而用相应的指标来衡量.方法是以浓度为横坐标,表示方式所对应的数值为纵坐标,通过线性回归得到纵坐标值为50%时对应的横坐标数值,所得到的浓度即为IC50.
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你做的什么实验我不太清楚,就以做抗肿瘤为例。那么结果是以抑制率为指标。样品的浓度选择要有一定的梯度,最高浓度样品对应的清除率应高于50%,同样最低浓度样品对应的清除率也应低于50%。做图时以浓度为横坐标,清除率为纵坐标,在纵坐标上找到清除率为50%的点,做横线,找到与曲线相交的点,再向下找到这个点的横坐标对应的数值,得到的浓度就是IC50。当然也可以用回归方程来找IC50,只不过我觉得前者方便些。回归方程用Excel和SPSS都能做出来。做回归方程时要注意线性拟合度,不能太低,我做的时候一般要达到0.99以上,不过具体的界限我也不太清楚。用不同方法求出来的IC50一定会存在差异,这也是正常的,即使是用回归方程采用不同的拟合曲线结果也不同,只要前后方法一致、曲线同所得到的点比较吻合就行了。
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hot_hot_hot[使用道具]
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我就是做的抗肿瘤增殖,但是我的药却起到促进增殖的作用
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zhezhe[使用道具]
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不要灰心,再重新做几次看看,看看是原料的问题还是手法的问题。或是从原料上入手,将原料提纯,或许结果能好一些。我也做过体外抗肿瘤,倒不象你有促进增殖作用,反而是清除率比较低,或者可以试试调整实验方法,做一些体内的指标,应该能有一定的收获。
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MTT分析法以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide, MTT噻唑蓝为基础。MTT为黄色化合物,是一种接受氢离子的染料,可作用于活细胞线粒体中的呼吸链,在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂,生成蓝色的formazan结晶,formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原)。还原生成的formazan结晶可在含50%的N,N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠(pH 4.7)的MTT溶解液中溶解,利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。也可以用DMSO来溶解。
MTT粉末和溶液保存时都需要避光,用铝箔纸包好就可以。实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。

MTT

步骤如下:
1:接种细胞:用含10%胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液,以每孔
1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200ul.

2:培养细胞:同一般培养条件,培养3-5天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。

3:呈色:培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS <ph=7.4>配)20ul.
继续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。每孔加150ul DMSO,振荡10分钟,使结晶物充分融解。

4:比色:选择490nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
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greenbee[使用道具]
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注意事项:
(1)选择适当得细胞接种浓度。
(2)避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行试验。在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
(3)设空白对照:与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。其他试验步骤保持一致,最后比色以空白调零。

MTT实验吸光度最后要在0-0.7之间,超出这个范围就不是直线关系,

IC50是半抑制率,意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度,然后计算各自的抑制率,以药品的浓度为横坐标,抑制率为纵坐标作图,然后得到50%抑制率时候的药品浓度,就是IC50。要点:药品2倍稀释,多做梯度,做点线图即可!

举个例子:各组浓度0.1、0.01、0.001、0.0001、0.00001、0.000001,稀释倍数为10,最大浓度为0.1,抑制率为0.95、 0.80、0.65、0.43、0.21,0.06。代入
计算公式:
Pm=0.95
Pn=0.06
P=0.95+0.80+0.65+0.43+0.21+0.06=3.1
Xm=lg0.1=-1
lgI=lg0.1/0.01=1
lgIC50=-1-1*(3.1-(3-0.95-0.06)/4)=-3.6025
IC50=0.00025

有一个公式可供参考;
lgIC50=Xm-I(P-(3-Pm-Pn)/4)
Xm:lg 最大剂量
I:lg(最大剂量/相临剂量)
P:阳性反应率之和
Pm:最大阳性反应率
Pn:最小阳性反应率

抑制率=1-加药组OD值/对照组OD值
公式中的最大最小阳性反应率就是最大最小抑制率

例:
用96孔板培养SMMC-7721肝癌做MTT测细胞活力,应该加多少1640培养基,多少MTT和DMSO合适?根据书上说的加200ul1640,20ulMTT,150ulDMSO 加DMSO之前要尽量去掉培养液,便于DMSO溶解甲臜颗粒进行比色测定

一般每孔4000个细胞为宜,既细胞浓度在20000个/ml,MTT加20ul,作用四小时后洗掉上清液,注意不要将甲瓉洗掉,然后每孔加150ul DMSO,在脱色摇床上振荡10分钟,然后测吸光值。

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一般要低于IC50,避免非调亡性杀伤的细胞太多,造成流式细胞仪检测碎片太多。我一般用1/2-1/3的IC50,作用时间为36h。一般肿瘤细胞系空白处理的调亡率应低于1%,用药后一般为5-10%(Annexin V),细胞周期的亚G0峰比较明显.
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介绍的非常精彩了,对于新手,我还有一个建议。

相信对新手(甚至是老手)而言,MTT结果不稳定是个非常恼火的问题,因此如果老板不反对,可以不用96孔板来做,而用48孔板做,这样消耗的试剂和细胞比较多一些,但是由于体积较大,因此加样时的系统误差就减小了,特别是对于新手而言,可以减少看到复孔中上下起伏不定的OD值的机会,获得比较稳定和具有重复性的实验数据。,
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hold住[使用道具]
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有些是不是会有雌激素样作用呢
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我前段时间也在做MTT,是在测骨髓基质干细胞诱导成骨成脂过程中的细胞生长情况。用的是96孔板,每空2×103,开始4天,OD值基本集中于0.7-0.9,后来,值陡然减小,基本在0.2-0.3徘徊,而且出来的曲线是锯齿型的,波动很大,请教,这是为什么呢?
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