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标题:[求助]脾脏制取淋巴细胞

bananapeople[使用道具]
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[求助]脾脏制取淋巴细胞



小鼠脾脏制取淋巴细胞后,培养几小时却发现细胞都沉在底下,上清里基本没有细胞,到底是怎么回事啊?请各位指教
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TNT[使用道具]
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就是这样的,细胞密度大啊,沉底
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bananapeople[使用道具]
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非常感谢哦,我等了好久也没人回复,今天看到你的回复我非常开心。你在40倍镜下观察到的脾细胞是什么形状的啊?它贴壁了,你是怎么处理的啊?希望多指教,我最近一直为这个头痛,因为又做了一次效果还是不好。
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whitesheep[使用道具]
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楼主具体是想解决什么问题不是很清楚,你是要用脾淋巴细胞做什么相关的实验?你取脾研磨后,是怎么分得淋巴细胞的?

培养的时候,由于细胞密度大是会沉底的,但T、B淋巴细胞是不贴壁生长的,在镜下看应该是呈圆形的,用枪轻轻吹打就能悬浮起来,但如果混杂了单核细胞的话,这类细胞是贴壁生长的,在活化状态下,贴壁生长的单核细胞能伸出角变长,变大。
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bananapeople[使用道具]
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我是做多糖抗肿瘤实验的,通过对荷瘤小鼠连续10天给药后,取脾脏制取脾淋巴细胞,用conA和LPS刺激淋巴细胞,看有没有增强免疫力。我是把整条脾脏用注射器芯在200目筛网上研磨,用HANK'S冲洗,然后离心1000转5分钟离心,加入0.85%NH4CL破碎红细胞,作用时间5分钟左右,然后离心,hank's洗涤两次,加入含10%小牛血清的RPMI-1640培养液,调整细胞浓度为2×106个/ml,培养2小时后,取上清加入96孔板备用。
我制过几次了,每次都不理想,上清里都没有细胞,贴壁的也是怪怪的,非常的小,40倍镜下都看不太清有没有核。并且上清拿去作MTT,基本没有紫红色,也就是根本没有细胞吧?我也没见过真的脾细胞长什么样,希望大家能帮我分析一下,我该怎么解决这些问题啊?我现在很着急啊,但又摸不着门路,先谢谢大家了。
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66+77[使用道具]
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无菌取出脾脏置入Hanks’液中,研磨为匀浆,将筋膜组织剔干净,收集滤液,1500rpm, 10min,弃上清,加入10ml Tris-NH4Cl混悬沉淀,室温静置10min,再1500rpm, 10min,弃上清,Hanks’ 液洗涤3次,(每次均1500rpm, 5min),用完全RPMI-1640培养基混悬沉淀,(调成浓度为1×108/ml的细胞悬液)转入培养皿中,置37℃,5%CO2下孵育30min后(去除贴壁的细胞),收获未贴壁细胞,再将浓度调成1×106/ml,加入96孔细胞培养板中,100μl/孔。这是我原来做的,应该会对你有用,附上淋巴细胞的图


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jujuba[使用道具]
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细胞沉底变形很正常,因为你只是裂解了红细胞,你得到的是单个核细胞,包括NK,T,B等。T细胞是不贴壁的,NK和B都可以贴壁,也就会变形。上清里没有细胞,拿去作MTT,当然没有紫红色。我们作淋转都是直接在上清中掺MTT培养4h后小心吸去上清加DMSO溶解甲臜颗粒。另外,不知道你用的破碎红细胞的0.85%NH4CL会不会对T细胞产生伤害,影响其生长。
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非常感谢两位,我今天恰恰要制取脾细胞了,真可谓及时雨啊!有关问题想请教mjc606:作淋转不是要培养48~72小时吗?为什么你们只培养4小时啊?
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bananapeople[使用道具]
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我按照shaverwoo教我的方法,制取淋巴细胞,这次96孔板中细胞长的还不错,但培养40小时后,加入10ul 5mg/mlMTT,培养4小时后,吸少量上清于显微镜下计数发现基本没有细胞,所以吸出100ul液体,加入100ulDMSO,振荡10分钟,结果发现实验孔的颜色仍然很浅,比对照孔要深一点,实验孔测出来的值都在0.4~0.5之间,对照孔在0.2~0.3之间,结果SI计算出来没有统计学意义,郁闷哦,为什么MTT总染不上色呢?是不是10ul太少了啊?我加的时候感觉就那么一点点。我在显微镜下还发现MTT染的细胞都是位于边缘还是在我加MTT那侧,想要请教各位,我在实验过程中还要注意什么啊?先谢谢了,真的很着急。
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bananapeople[使用道具]
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试了几次,终于找到合适的浓度了,但又遇到问题了,空白对照(100ul培养液+20ulMTT+150ulDMSO)读值居然2.827,比实验孔的还大;实验孔也很奇怪,明明在显微镜下看着好多结晶,加DMSO后颜色也深,结果却比颜色浅的测的值小,希望各位大侠帮忙分析一下,是哪里的问题。
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