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标题:[求助]冻存、复苏失败,原因何在?

orangecake[使用道具]
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1
 

[求助]冻存、复苏失败,原因何在?


我刚培养B95-8细胞一个月左右,提取并保存了EBV,但解冻(1分钟内溶解)后用来感染淋巴细胞,一周多了,还没有观察到淋巴细胞形态发生改变,真是郁闷啊。我怀疑是不是提取的EBV浓度不够(拷贝数不高)。另外,由于培养箱进行维修,我将B95-8全冻存起来,可是复苏时却没有一个能复苏成功。
我冻存的方法是:RPMI 1640培养基 70%,新生牛血清(Hyclone,为了省钱啊)20%,甘油10%;4℃ 2小时,-40℃ 5小时左右,然后置-80℃(我们这边没有液氮罐啊,上届同学培养时老板不让买呀)。冻存时间大约10天左右。结果复苏发现有很多细胞碎片,我想细胞在冻存时已经破坏了(我冻存前用胰酶消化了的,传代时也用胰酶消化,但传代却没有问题,细胞生长也很好)。我就不明白,我倒底错在哪里了。
另外,请问哪位战友能赠送一点B95-8细胞给我?或者给钱,你开个价吧。
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u234[使用道具]
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2
 

Do not put your cells at -40℃ so long.
my protocol: 4℃ 1小时,-20℃ 2小时左右,然后置-80℃
90% FBS + 10% DMSO
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idea2011[使用道具]
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3
 

4℃ 2小时,-40℃ 5小时左右,问题在这里了。-60度以上是细胞的危险温度了,要控制好时间
我的细胞是:4度 30分钟,-20度 一小时,-80度(过夜--数月都没问题),-196度。
跳过-20 OR -80度,直接从4度过渡到-196度都做过。冻存一样成功
20%的FBS不是大问题
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u234[使用道具]
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1。细胞冻存和复苏要遵循“慢冻筷融“的原则。就是说冻存的时候要有梯度的降温,但是复苏细胞的时候一定要动作快点提前水浴锅加热到37度,拿出细胞后快速投入,使其溶解,缩短其在0—4度的停留。
2。注意冻存前细胞的活性,这一点很重要。尽量选增殖活跃的细胞,长到70-80%后胰酶消化,加培养基中止,离心弃去胰酶后加冻存液。我们用的冻存液中DMSO浓度为6%。
3。冻存和复苏时都要确保无菌,呵呵。
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>20%的FBS =10%DMSO没有问题
应该是温度控制的原因.
建议买冻存盒.
如果实在不能买,可将细胞管包好浸泡在室温的异丙醇中,一同放入-80度冰箱1-2天.
不必4度,-20度转来转去
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glass[使用道具]
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支持楼上观点,甘油可以换成10%DMSO,4度半小时,-20度一个半小时,然后放在-80度低温冰箱可以保存两个月,用液氮可以保存更久,不过我们没有。感觉-80度保存也挺好的。
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我们的方法: 4℃ 1小时,-20℃1小时左右,不能太长时间容易形成冰晶,然后置-80℃ 过夜,再转入液氮保存.
90% FBS + 10% DMSO
复苏的时候放入37度的水迅速解冻,500rpm离心3min,弃上清加入新鲜的培养液培养,24h后换液即可
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jrwyyplt[使用道具]
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我有B958细胞,在北京,你在哪?可以购买
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911[使用道具]
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-20℃到-60℃是危险区,这一步时间一定不能太长,否则容易形成冰晶.一般-20℃两个小时后就要转移到-80℃冰箱.-80℃通宵后放入液氮罐里.甘油换DMSO我觉得影响不大,最好是能买个程序冻存盒,方便,而且细胞成活率高.
对了,还有冻存前细胞的状态也很重要,最好是用对数生长期的,效果会好很多.
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我刚培养B95-8细胞一个月左右,提取并保存了EBV,但解冻(1分钟内溶解)后用来感染淋巴细胞,一周多了,还没有观察到淋巴细胞形态发生改变,真是郁闷啊。我怀疑是不是提取的EBV浓度不够(拷贝数不高)。另外,由于培养箱进行维修,我将B95-8全冻存起来,可是复苏时却没有一个能复苏成功。
我冻存的方法是:RPMI 1640培养基 70%,新生牛血清(Hyclone,为了省钱啊)20%,甘油10%;4℃ 2小时,-40℃ 5小时左右,然后置-80℃(我们这边没有液氮罐啊,上届同学培养时老板不让买呀)。冻存时间大约10天左右。结果复苏发现有很多细胞碎片,我想细胞在冻存时已经破坏了(我冻存前用胰酶消化了的,传代时也用胰酶消化,但传代却没有问题,细胞生长也很好)。我就不明白,我倒底错在哪里了。
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