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标题:[求助]大家帮忙看看我的MTT步骤!

吴才子[使用道具]
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[求助]大家帮忙看看我的MTT步骤!


请大家给与指点,为什么我做出的MTT结果总不理想呢?我做食品中某种成分的抗癌效果,用临床上的化疗药做阳性对照,可现在连阳性药的结果都做不出效果来,十分困惑,毕业在即,肯请大家赐教!!!
常规方法消化收集细胞(SGC7901),制成单细胞悬液,计数,调整细胞浓度为1×105/ml接种至96孔培养板中,每孔加入细胞悬液100μl(相当于1×104个),以不含细胞的培养液作为空白。将培养板置于37℃、5% CO2培养箱中贴壁培养24h后,各孔分别加入100μl的药物溶液(以生理盐水配置),每个浓度设6复孔,以5-氟脲嘧啶作为阳性对照,以生理盐水作为阴性对照。分别培养24、48和72h后,每孔加入MTT 20μl,继续孵育4h后,快速翻板倒掉培养液,每孔加入100μl DMSO,水平振荡5min后用酶标仪在490nm处测定各孔的吸光度值。
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铜雀[使用道具]
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2
 
各孔分别加入100μl的药物溶液(以生理盐水配置)

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一般用缓冲液或直接用培养液配置吧,没听说过用生理盐水配的
MTT这种方法本身就不敏感
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bananapeople[使用道具]
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我曾经做过的MTT的步骤,供参考,祝好运

1. 倾去培养液,加入无菌的PBS(pH=7.4)荡洗3次。再按照无血清的培养液与MTT染液9:1的比例共加入500μL,置于培养箱中培养4小时。
2. 弃上清,加入500μL DMSO,室温下裂解30min,使颜色颗粒充分溶解。
3. 取0.2mL待测液加入到96孔细胞培养板中,酶标仪测定吸光度值。

这个是在48孔板中测的,用96孔板测最后就不用转了
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viviwang1987[使用道具]
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我感觉您的细胞悬液体积与药物体积不大合适。我一般为9:1,前提是得保证药物的终浓度,药物体积太大,培养液被稀释(药物最好用培养液配制,生理盐水也可以,但体积不能太大),影响细胞生长的。您的药物是否溶于培养液需做预实验的。
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吴才子[使用道具]
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我做MTT的具体方法是在细胞经过各种所需处理后(比方说损伤或加药后),直接在96孔板中加入MTT(储存液浓度为5mg/ml,使用时用PBS稀释,终浓度为0.5mg/ml), 37℃,5%CO2培养箱内孵育 4-6小时,用扣板法将上清液弃掉(扣板法可能会将紫蓝色甲瓒颗粒倒出,所以也可以用枪吸出),然后加入二甲亚砜(DMSO)200ul/孔,轻摇培养板,使甲瓒颗粒完全溶解后,用全自动酶标仪波长为550nm测定OD值。
药物可以用生理盐水,但有些生理盐水偏酸,我一直用pbs配置。
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mickeylin[使用道具]
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我觉得你的细胞接种密度有点高,应该下调再试一下,基本上万/ml差不多,而且随着药物作用时间的延长,相应的细胞接种密度应该随着降低。加药的体积太大了,应该为细胞悬液的十分之一或二十分之一。生理盐水的比例太大会影响细胞的生长。如果细胞不能正常生长怎么能体现出药物的抑制作用呢?还有,我认为最后将培养基从孔内吸出比扣板的方法更能减小误差,当然吸的时候要注意别碰触到底部结晶。别的步骤倒是没有什么问题。
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leifengta[使用道具]
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7
 

个人觉得细胞贴壁后,可以吸掉原培养液,每孔再加入用培养基配置的药物100ul。24H后 原来的100ul培养液可能已经变酸,再加入100ul 生理盐水配置药物,培养液浓度进一步稀释,可能细胞状态不好。如果你的药物必须溶在生理盐水中,建议你配成高浓度,然后用培养液系列稀释,再加入96孔板。再有,也可能你的药物浓度低,所以效果不明显。细胞密度每孔1万,个人觉得是可以的。
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dragonkilly[使用道具]
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可以吸掉MTT液体的,加入MTT4hrs之后,直接加入酸化的百分之10SDS来溶解。可以防止吸掉结晶。
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66小飞侠[使用道具]
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1、我觉得加入DMSO溶解的时间太长了,空气中氧化还原的物质不要太多阿。MTT的原理就是一个脱氢酶还原反应。所以,时间长了,差异就小了。你觉得呢?震荡5分钟就可以了。
2、药物加样量太大,培养体系变化太大了。
3、培养时间长的时候,中间一定要加一次培养基的。
4、加MTT的时候要弃掉培养基和样品,防止还原性样品影响结果。
5、接种量还可以的。显微观察空白组细胞是否已经出现分裂,可以确定细胞生长状态,再进行下一步显色。
6、扣板,不如用1毫升注射器吸取。
仅供参考!
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BUK[使用道具]
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10
 

楼上这位朋友用1ml注射器吸掉培养液倒是没试过,下次板少的时候试试看。可是板多的话,吸起来可是够辛苦的!
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