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标题:[求助]有关乳鼠心肌培养时消化下来的细胞很少的问题

mysmdbl[使用道具]
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[求助]有关乳鼠心肌培养时消化下来的细胞很少的问题



本人近期进行了5次乳鼠心肌培养,一次比一次消化下来的细胞少,本人用的是高糖的DMEM培养液加10%的小牛血清,0.25%的胰酶。共消化四次,每次消化20分钟,第一次消化的产物弃去,后3次加等量的培养基终止消化,滤网滤过1000转离心8分钟沉淀下来的细胞加培养基差速贴壁两个小时再贴壁48小时看实验结果。每次做7只鼠只能获得两个3.5cm培养皿的细胞。
本人想请各位帮忙解答一下消化细胞少与哪些因素有关,多谢!
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kswl870[使用道具]
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注意几点:
1、0.25%的胰酶浓度太高,可以改为0.15~0.2%。
2、时间太长,每次消化只要10-12分钟就要吸去已经消化的细胞。
3、用等体积的小牛血清中止消化,离心取细胞,用血清在培养箱孵育。
4、要消化10次左右,把每次消化分离的细胞加在一起,在进行实验。
5、每次7只太少了,我做过40多只的。
6、差速贴壁1.5~2小时,与细胞活性和贴壁的培养瓶(皿)有关,要观察。
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楼上的朋友说得都对,不过有一点我意见不一,比如做组化的时候,平均一个孔一个老鼠足够的细胞密度,不一定要那么多,当然做western,流逝另外。另外,感觉还是0.1%的酶比较好,0.25的太猛了。同时也可以吹打,加快消化速度,一般4-5次就消化完毕。请楼主参考
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KGZ564[使用道具]
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我们所用的胰酶浓度一般为0.08%,如果消化效果不好也可考虑一下消化温度的问题,是否能保证胰酶的最佳温度.
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911[使用道具]
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个人感觉,温度的差异可以用吹打的方法来弥补,不一定要控制在37度的,毕竟水浴来水浴去麻烦。另外,筛网过滤是否一定需要?我每次都不用,也没发现什么不好,即使有细胞碎片可以换液来解决得。

PS:心肌细胞算是比较杂实的细胞了,经得起猛烈吹打,很多细胞比它娇嫩的。
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langlang[使用道具]
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老鼠的只数不必太多,只要每次消化完全,就能够得到所需细胞数,7-8只足够了。个人认为是你消化的程度过了,我以前做也是每次离心时看到的细胞很少,为了得到更多的细胞延长离心时间,结果又损失了部分细胞。后来降低酶的浓度,每次消化10分钟,离心后都可见到细胞,状态很好。其实你可以观察,如果你收集的细胞状态好的话,贴壁的时间就早,90分钟分离就可以了,细胞悬液里大部分为心肌细胞,如果消化的不好,90分钟后成纤维细胞也不能完全贴壁。建议你从0.06%的酶浓度开始做起,或设几个浓度找出最佳条件,一定要控制好37度的环境,很重要(可以在孵箱中进行),10分钟,收集除第一次的细胞悬液。过筛网不是必要条件,我每次都做,是为了计数种板更准确些。
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kswl870[使用道具]
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不好意思,忽略了一个问题:你用什么配胰酶?

要用分离专用的缓冲液配制,不含钙离子。配制时先调PH值,再加入Herpers液。我现在记不住组成,上班时看了再告诉你。

太低浓度的胰酶,消化时间延长,做久了好象有点烦,对吗?
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pengke1983[使用道具]
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要是麻烦,直接用NaOH调节pH也行。
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kswl870[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 pengke1983 于 2012-7-31 13:59 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

要是麻烦,直接用NaOH调节pH也行。

-----调PH值用0.1M的HCl,或0.1M的NaOH,调至7.2-7.4,但HERPERS要后加,否则已经缓冲了,再调很困难。要注意渗透压。
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mysmdbl[使用道具]
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谢谢各位的帮忙!
我是用d-hank's液配制的胰酶配好之后调的PH值,7.3-7.4之间吧。不知道有没有问题。
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