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标题:[求助]我培养的人原代肝细胞怎么淋巴细胞贼多?

youyou99[使用道具]
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[求助]我培养的人原代肝细胞怎么淋巴细胞贼多?

我是用手术切除的肝组织,行原代肝细胞培养,用0.25%胰酶和0.02%Ⅳ胶原消化,1000rpm,5min,三次;行胎盘蓝染色观察,怎么全是小个细胞,问别人,说是淋巴细胞,心一下子凉了半截,后用DMEM+10%FBS培养,(96孔培养板,明胶铺板),12h后观察,还是满视野小细胞,未贴壁,中间能看到几个稍大个的细胞,打听别人,说可能是肝细胞。怎么回事啊,大家帮我想想办法,怎么去除淋巴细胞,而不损伤肝细胞,最后能得到满意数量的肝细胞?谢谢!
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youyou99[使用道具]
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笔误,是0.02%Ⅳ胶原酶
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bananapeople[使用道具]
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提出以下个人意见:
1.首先对于您制作原代肝细胞的方法,提出以下问题:您直接用胰酶和胶原酶消化,那么您如何去除血管里面的细胞?这是一个很关键的问题,也是混入肝细胞的杂细胞的主要来源.
2.关于"行胎盘蓝染色观察,怎么全是小个细胞,问别人,说是淋巴细胞",我觉得这种说法不太正确.因为您刚刚消化完,任何细胞都是成圆形的小细胞,怎么就能判断它到底是什么细胞呢?
3.关于"DMEM+10%FBS培养,(96孔培养板,明胶铺板),12h后观察,还是满视野小细胞",建议您改用1640+10%FBS,6孔板+鼠尾胶原,24h后观察看看情况怎么样.
关于正常原代肝细胞形态您可以参看细胞版的细胞图片
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/3168731')
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youyou99[使用道具]
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1、拿到少量肝组织后,在无菌台里,我是用剪刀去除肝被膜和肉眼可见较大的管道组织后,用D-hank液洗数次,至于小的管道组织没有处理。查了文献,也没这方面的报道。请战友赐教。
2、至于是用DMEM,还是1640,都有人用过,我查文献,DMEM多用于贴壁细胞,1640多用于悬浮细胞;另外鼠尾胶原,是自己取材,还是有公司出售?
看来如何去除杂质细胞是关键,尤其是淋巴细胞,大家有什么高招?谢谢。
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kulee[使用道具]
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淋巴细胞分离液?
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lixi559[使用道具]
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没分过人的,分大鼠的,感觉你的离心是否时间太长了?
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tianmei001[使用道具]
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淋巴细胞是悬浮生长的,而肝细胞应该是贴壁生长的啊,并且据我所知,如果没有特殊的细胞因子(比如IL-2等等),淋巴细胞是很难存活的,这样看来,至少,不需要非常担心淋巴细胞的混杂吧
当然还有很多其它细胞的混杂(管道组织中有很多细胞可能混杂的),因此还是需要冲洗的
我个人觉得最重要的是怎么样让肝细胞贴壁,只要肝细胞贴壁了,很多悬浮的细胞自然就可以区分,通过换液除掉了
一点粗浅的意见,祝实验顺利!
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whitesheep[使用道具]
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1\首先,你说的淋巴细胞我觉得是不对的,没有证据说明就是淋巴细胞,消化后的细胞,所有细胞都是细小圆形的,贴壁后(悬浮细胞除外)才能显现细胞的正常形态.
2\消化肝细胞,用胶原酶还是胰酶不是关键问题,主要是要控制消化时间.一般而言,胶原酶对细胞的损伤要小一些.消化组织,我们的做法是分二段消化:第一段:0.25%胰酶和PBS按1;1加入,消化3-5分钟,即使收集细胞,用血清终止细胞中的酶. 后一阶段,只加0.25%胰酶,不加PBS,消化5-8分钟,收集细胞,血清终止酶作用.
3\肝细胞是贴壁生长的,淋巴细胞悬浮生长,特性完全不一样.换液时即可将淋巴细胞除去.
4\你的细胞不贴壁,可能:A:消化过度,细胞损伤 B:包板不佳(0.03%的I型胶原蛋白(PH2.0)对于难贴壁的细胞,效果比别的好(仅仅是我个人的经验,供参考)  C 肝细胞贴壁慢,一般24小时行第一次换液,过早换液也影响贴壁
5\关于培养基:DMEM适合贴壁生长的细胞,1640适合悬浮生长细胞(最初就是专门用来培养淋巴细胞的).所以,你没必要换成1640.DMEM有高糖和低糖两种,如果细胞对糖没有特别要求,一般高糖DMEM更有利于细胞增殖,特别是增殖快的细胞.所以,如果你要换,我建议你试试高糖DMEM.我们用高糖DMEM培养过好几种细胞,效果都比低糖的好.希望对你有帮助!
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yueban-1147[使用道具]
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消化前应该无钙灌流,去除血细胞。消化用I型胶原酶较好,最好能往血管里循环灌流,小于20min。剪碎,如果消化得好的话,呈糊状。过筛网,洗涤,50g 水平离心3min, 重复3次。活细胞计数大于85%。以150000个/cm2接种。
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