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标题:[求助]请大家帮我看看我的角质形成细胞为什么不贴壁

ha111[使用道具]
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1
 

[求助]请大家帮我看看我的角质形成细胞为什么不贴壁


【求助】请大家帮忙看看,到底哪里出现问题了。
先是鼠尾胶原的提取。
1.鼠尾胶原制备过程
取重约250g大白鼠一只,从鼠尾根部剪断鼠尾,刷洗干净后,置75%酒精中浸泡30min。无菌条件下将鼠尾切成约1.5cm的小段,逐一剥去毛皮,用有齿啮镊抽出尾腱置平皿中。剪碎尾腱,移至装有60ml 2%(我试过150ml0.1%冰箱里放置时就分层了,60ml 2%刚好一根鼠尾全溶,在冰箱里呈稠状液体)消过毒(高压,第一次过滤效果没高压好)的醋酸溶液的广口瓶中浸泡,密封好瓶口,置4℃冰箱中,间或振摇。1w后,移入灭菌离心管中,离心(4000r/min)30min。吸取上清液分装入小瓶,于-20℃冰箱内保存。
铺瓶:吸少量鼠尾胶原平铺培养瓶全覆盖贴细胞面,37℃过夜,吸取培养瓶内多余鼠尾胶原,置超净工作台,室温,开抽滤,紫外晾干后,使用时用培养基洗去多余胶原。已经用培养基试过,此批鼠尾胶原没污染。
2。角质形成细胞的分离
医院取包皮置于D-Hanks液中取回,用碘酊搽后酒精再搽,然后就剪成1cm*1cm方块泡双抗1小时,后加dispase4℃消化近20小时,分离表皮真皮,表皮剪碎置于胰酶-EDTA(3倍体积)37℃,消化30分钟,DMEM全培养基终止消化,200目筛过滤,离心1000转10分钟,弃上清,再加入DMEM全培养基吸管吹打细胞,再过滤离心,弃上清后加全培养基吹打细胞后放入已铺胶原的培养瓶中培养,5天后,竟然还没有贴壁.
好郁闷。
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mamamiya[使用道具]
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2
 
以我看你的鼠尾胶没有太大问题,因为如果是贴壁细胞的话,只要活力正常即使培养表面没有处理也会有贴壁可见。问题可能出在细胞培养上。我建议你先用台盼篮染色细胞看看活力然后再从以下方面找原因:
1)保证医院取回的组织细胞有活力。
2)减少消化的时间,尤其是胰酶。
3)过筛网和1000rpm(800rpm/3min即可)离心都会对细胞造成较大损伤。在去除组织块的前提下尽量不用。
4)吹打时候动作轻缓,枪头口剪大,用火焰抛光。
5)细胞,尤其是分化程度高的原代细胞,培养往往需要加入因子。
6)培养液pH。
暂时想到这些,祝你顺利!
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gmjghh[使用道具]
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个人觉得人的表皮细胞是比较好养的,猪和鼠的才困难。
问题:1胰酶消化时间太长。
2最好用K-SFM培养基。
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小螺号[使用道具]
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我今天尝试用K-SFM培养基,以前就买了 ,一直舍不得用,八○○一瓶啊,到现在实在没有办法。
不过今天和一个同学聊天时谈起细胞培养,他们是做骨头的,最后的骨碎片也放到培养基中培养,我中午做实验时就把表皮碎片也放到培养基里养,不知道这样行不行。
还有请问K-SFM培养基哪个地方卖得便宜一点?如果这样下去实验经费可不是一笔小数目啊!
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ha111[使用道具]
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5
 
我今天看了我得细胞,结果是一塌糊涂。看的就像是黑点点,感觉没有细胞贴壁(已经5天了)胰酶消化时间是10分钟。用的是无血清培养基。在离心的时间上有问题。我每次都1000转离心10分钟,可是细胞只是像漂浮物一样沉在试管底部,在去上清时很容易就被吸走了。结果最后得到得细胞少的可怜。
难道是我取材得时候细胞就死了?我取材时用的含双抗的缓冲液放的,拿回来照照紫外就拿进细胞培养室做。
过滤也改成用尼龙筛网100目的。
大家快帮帮我吧。先谢谢大家了。
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ha111[使用道具]
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无血清培养基应该不用铺胶原吧,会不会是培养瓶的问题?
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ha111[使用道具]
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请问广州有没有人养角质形成细胞?我都想亲自上去看看到底是怎么养的
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baidukk[使用道具]
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个人觉得应该胰酶消化8分钟,不要超过10分钟,中止胰酶要快,吹打细胞,次数要多,尽量将表皮细包吹打下来 ,过200目筛。离心接种。
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ha111[使用道具]
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谢谢,我按你教我的方法尝试后,昨天看到细胞我感觉应该是贴壁了。不过我一直等了5天才敢进去看得。接下来就是做细胞鉴定了,再次谢谢你!
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