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标题:[求助]关于胰酶消化的问题

mickeylin[使用道具]
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1
 

[求助]关于胰酶消化的问题


在用胰酶消化贴壁细胞的时候,如何很好的控制时间?有时候怕细胞消化过度,结果时间太短,细胞很难吹起来;消化过度细胞又很难长好!还有在用培养液吹细胞的时候,如何减少泡沫?今天实验由于泡沫太多,根本无法观察,只好先传到培养瓶再看,郁闷!我加的血清是10%,是否跟血清质量有关,还是操作有问题,高手们帮忙指点一下!
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tieshazhang[使用道具]
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2
 
我给出如下几点建议:
1。根据细胞数决定所加trypsin的多少。一般trypsin都是用1%。而6cm皿一般长满要有1×107个细胞(根据不同细胞会有所变化),所以一般加1,000ul~1,500ul trypsin solution。如此量的细胞加如此量的trypsin,一般digest 5min左右即可。
2。如果不行,用timer计时。先计时4min,从co2 incubater中拿出,置显微镜先看看,如果不行,再放进去计时若干分钟(根据你前4分钟)的情况而定。另外,我所说的4分钟是根据第一条的条件说的,请不要误会。

1。吹的时候尽量贴近皿底。
2。吹的时候不要太猛,舒缓一些。
3。吹的时候枪头内的细胞混悬液不要放干,以致吹出泡沫,要留有一些,再从倾斜的皿底吸出一些细胞混悬液,再在皿底吹细胞。
4。您提到的泡沫跟血清是否有关,我想答案是肯定的,应该有关。但我想关系不是太大,因为我在吹细胞时没有吹出很多的泡沫,这种原因我想人为可以避免。
以上建议仅供参考,如有疑问我们再行讨论。
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mickeylin[使用道具]
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太谢谢了,我知道我的问题所在,下次操作会注意!
不过有一点不明白,根据细胞数决定胰酶量,1%是什么意思?100个细胞加1ul胰酶吗?
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yysr238[使用道具]
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4
 

我们用的胰蛋白酶浓度是0.05%-EDTA溶液,具体配方在细胞培养的书上都有,书上还说一般消化5min,但到目前我养过几种细胞,都不用消化这么久。A549,我消化2min就可以,H460,3min可以,HEK293,1min或者1.5min可以,5895长一点,四五分钟的样子。这个没有具体规定,开始时最好多在显微镜下看,时间长了就能掌握了。一般是4×镜下看到细胞都变圆即可,我个人操作时,一般是在边缘处有一点脱落才开始终止消化,这时候比较容易全部吹下来,否则会有少量吹不掉,传代后就会累积生长,很麻烦。
气泡完全可以避免,像你所说
仅供参考,祝好运!
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yysr238[使用道具]
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忘记一点,我们实验室的习惯是:10cm的培养皿,每次加1ml 预热过的trypsin进去,预热也不到37度,只是不让他太冷即可,晃动,盖满整个皿底后,吸去trypsin,然后在放培养箱里,开始计算时间
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yysr238[使用道具]
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6
 

以上都是经验性的东西,告诉大家一个需要锻炼后能长久使用的方法:在培养器皿底面背后放一个深色的东西,例如黑瓶盖,消化过程中,透过底面看黑瓶盖,底面的细胞在消化开始的时候,比较平整,消化过程中,会慢慢地发“毛”,知道毛玻璃地感觉吧,就像平玻璃慢慢变毛,科学地说,细胞层地折光度会发生变化,会显得毛绒绒些。这个方法需要练习。等有些细胞脱落,说明已经消化过了。
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yysr238[使用道具]
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7
 

再解答一下怎么不起泡沫:

吹地过程中,永远把吸管的头浸入液面下吹,就这么简单。
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am10[使用道具]
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8
 

我用的是2.5%的trypsin,每次消化十分钟细胞都变化不大,并且有时候是局部细胞已经脱落,而其他部位的细胞还没变圆,这是什么问题呢,望大家指教!
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chuntian1983[使用道具]
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trypsin的浓度2.5%太高,一般使用0.25%,0.125%,0.05%的浓度.消化时酶的温度应37度.胰酶应冷冻保存.4度只能放2个星期.
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am10[使用道具]
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trypsin应该是浓度越大消化作用越强吧,我用2.5%的都消不掉用低浓度的行么?冷冻保存是不是要放-20啊
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