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标题:[求助]流式细胞仪测CTL

lagua123[使用道具]
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[求助]流式细胞仪测CTL


各位师哥师姐们,我需要用流式测CTL的纯度和数量,需要用哪些抗体,如何选用荧光染料,在哪能找到一些相关资料,谢谢。
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dotaaa[使用道具]
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surface marker: CD3+, CD8+
Intracellular staining: Perforin
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lagua123[使用道具]
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谢谢。能否说的再详细点,我第一次接触,我需要测的是特异性CTL的数量和活性,做流式可行不可行?
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zranqi_1[使用道具]
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特异性CTL的数量可以用Tetrmer技术等来检测(Tetramer可以从公司订购),Tetrmer技术的介绍见下面的链接。
cuturl('http://probes.invitrogen.com/handbook/boxes/1642.html')

特异性CTL的数量和活性可以用IFN-γ ELISPOT方法来检测,有关资料参看下面的链接。
cuturl('http://www.elispot.cn/')

特异性CTL的活性可以用51Cr释放试验等来检测。

IFN-γ ELISPOT实验方法可参看试剂盒说明书(cuturl('http://www.elispot.cn/Download.asp'))。下面几篇文章中有这几个实验的大概方法,可以参考一下,也可根据自己的具体实验参看相关文献。
cuturl('http://www.nature.com/bjc/journal/v86/n8/full/6600223a.html')
cuturl('http://www.im.ac.cn/user/gaof_pdf/01..pdf')
cuturl('http://www.ashi-hla.org/publicationfiles/ASHI_Quarterly/26_3_2002/3rd-Q-Immunotrack-lymph.pdf')
cuturl('http://www.jimmunol.org/cgi/content/full/165/12/7285')

你这是个免疫学方面的问题,到“免疫学与病原生物学讨论版”的“免疫学”子板去求助,应该能得到更多的帮助。
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kulee[使用道具]
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作为有杀伤效应的CTL,是通过分泌Perforin来直接杀伤靶细胞,或分泌IFN等细胞因子来激活其他的免疫途径.但是你要得到特异的CTL的数量,你要把CTL同其他的细胞区别开来..CD3+的细胞是T细胞,而CD8+的细胞是CTL,通过对你获得的细胞进行CD3CD8的标记,你就可以通过流式检测出你的细胞群中间有多少的T细胞,多少的CTL,通过Perforin的标记你就可以知道有多少的CTL具有杀伤功能或者正在执行其功能.这三个荧光标记的抗体你都必须购买,还有一些比如固定剂,通透剂也需要购买,我用的都是BD公司的,你可以取找他们问一下.

拿PBMC来作为一个例子:
1:分离PBMC,取10*6的细胞,用 staining buffer 洗涤两次,100ulstaining buffer重悬,加入CD3-PC5,和CD8-PE.4度标记15MIN,洗涤两次,1500RPM离心5分钟.
2由于Perforin是在细胞里面的,所以你的细胞必须通透,也就是在细胞膜上打孔后,你的抗体才能进去. 通透剂4度通透20分钟.洗涤两次,2500RPM离心5分钟,注意:通透之后细胞变轻,离心速度要加大,还有要用特殊的WASH BUFFER,以免staining buffer 重新关闭孔.
3,加入FITC标记的Perforin,4度标记30分钟,洗涤两次后就可以上流式了.
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lagua123[使用道具]
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非常感谢你的关注,我还想问一下,哪可以查到相关的资料,做的具体步骤,谢谢。
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大白菜[使用道具]
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很巧,我也碰到了同样的问题,
我有几个问题想请各位前辈帮忙解答一下:
1.我做的实验是测患者外周血中CTL的perforin的表达,获得患者血标本并不是固定的。因为流式不在我们科室做,如果每天都去做,那是相当麻烦。
因此,我想问,是不是可以把血标本冷藏,待收集了一定数量的标本再一次做流式?如果可以,怎么保存?
2.研究经费只有3000,但我看了一篇文章中说,CD3+CD8+双标抗体就要2000多。如果真是这么多钱的话,我就真作不成了。CD3+CD8+双标抗体真的要这么多钱吗?
3.有没有什么办法可以一次性把CD3+CD8+T细胞从外周血中提取出来?我听说有一种磁珠可以达到这种效果,(how much?)
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xueyouzhang[使用道具]
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很巧,我也碰到了同样的问题,
我有几个问题想请各位前辈帮忙解答一下:
1.我做的实验是测患者外周血中CTL的perforin的表达,获得患者血标本并不是固定的。因为流式不在我们科室做,如果每天都去做,那是相当麻烦。
因此,我想问,是不是可以把血标本冷藏,待收集了一定数量的标本再一次做流式?如果可以,怎么保存?
2.研究经费只有3000,但我看了一篇文章中说,CD3+CD8+双标抗体就要2000多。如果真是这么多钱的话,我就真作不成了。CD3+CD8+双标抗体真的要这么多钱吗?
3.有没有什么办法可以一次性把CD3+CD8+T细胞从外周血中提取出来?我听说有一种磁珠可以达到这种效果,(how much?)

可以先把PBMC分离出来,—80度可以保存几个月,液氮里时间更久,但是你经费只有3000元,做这个比较难,磁珠分离价格昂贵,3000元远不够,呵呵
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utt0989[使用道具]
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作为有杀伤效应的CTL,是通过分泌Perforin来直接杀伤靶细胞,或分泌IFN等细胞因子来激活其他的免疫途径.但是你要得到特异的CTL的数量,你要把CTL同其他的细胞区别开来..CD3+的细胞是T细胞,而CD8+的细胞是CTL,通过对你获得的细胞进行CD3CD8的标记,你就可以通过流式检测出你的细胞群中间有多少的T细胞,多少的CTL,通过Perforin的标记你就可以知道有多少的CTL具有杀伤功能或者正在执行其功能.这三个荧光标记的抗体你都必须购买,还有一些比如固定剂,通透剂也需要购买,我用的都是BD公司的,你可以取找他们问一下.

拿PBMC来作为一个例子:
1:分离PBMC,取10*6的细胞,用 staining buffer 洗涤两次,100ulstaining buffer重悬,加入CD3-PC5,和CD8-PE.4度标记15MIN,洗涤两次,1500RPM离心5分钟.
2由于Perforin是在细胞里面的,所以你的细胞必须通透,也就是在细胞膜上打孔后,你的抗体才能进去. 通透剂4度通透20分钟.洗涤两次,2500RPM离心5分钟,注意:通透之后细胞变轻,离心速度要加大,还有要用特殊的WASH BUFFER,以免staining buffer 重新关闭孔.
3,加入FITC标记的Perforin,4度标记30分钟,洗涤两次后就可以上流式了.

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您好!想请教几个问题:
1. 为什么使用PBMC,不直接用全血?因为分离PBMC对细胞表面的抗原或者活性都有影响的。
2. 你写的离心速度换算成离心力是多少?
3. 特殊的WASH BUFFER是什么?
4. Perforin4度标记30分钟,我们一般室温30分钟,你的会不会结合不完全?尤其在检测表达量很低的样本时。
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lagua123[使用道具]
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很遗憾。
我的这个想法老板已经给枪毙了,
现在又开始郁闷了!
后来我又想用双标免疫组化的方法做一下,不太懂。
加之,老板的话。
放弃算了。
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