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标题:[求助]细胞培养液中出现小颗粒,是什么?

ero11[使用道具]
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1
 

[求助]细胞培养液中出现小颗粒,是什么?


最近细胞培养时培养液中总是出现小颗粒,在显微镜下显示比细菌小,位于细胞外,还有轻微原地运动,但不是很明显。用双抗洗过,仍然会出现,但细胞状态还可以,传代后细胞生长不受影响。请教这是什么原因,该如何处理。谢谢!
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redbutterfly[使用道具]
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2
 
如果排除枝原体污染的话,请你注意一下你是否因为怕污染而将细胞瓶盖拧得太紧了?CO2进入细胞瓶受阻?松一下瓶盖看看。
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mamamiya[使用道具]
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3
 

是不是牛血清得问题啊??!是不是血清分解后形成那种小黑点呢
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qqq111[使用道具]
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4
 

培养瓶盖是透气的,应该不存在这个问题。如何判断是支原体污染呢?血清我是分装使用的,下次用另一瓶试试,谢谢!
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wu11998866[使用道具]
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5
 
支原体污染的检测方法:
支原体污染并不引起细胞外观的明显变化,可利用一系列直接或间接的方法检测支原体。由于支原体种类的多样性,目前还没有一种方便、广谱、特异性高、准确的检测方法。因此,有必要对不同检测方法的灵敏度及局限性有所了解。
1、直接培养法:直接培养法是最敏感的,但也是最耗时的检测方法,大约需28天。从理论上讲,只需一个有活力的支原体就能在培养基上生长。但某些难以培养的支原体限制了直接培养法的应用。理想的直接培养法应采用多功能的培养基,以降低假阴性率。为增加对低滴度和低活力支原体检出率,应采用有氧和无氧两种培养条件及几种传代方式。直接培养法还需要活性支原体作为阳性对照,而且耗时,操作繁琐,因而不适于大多数实验室。
2、间接检测方法:检测支原体污染的间接法包括:PCR、ELISA、电子显微镜检查、DNA探针、DNA荧光染色及生化分析法等。间接法能检测到107/L的滴度。通常情况下,支原体污染后其滴度一般超过109/L,故尽管间接法不敏感,但相对较精确。由于支原体的多样性,表达不同特异性的抗原及酶,为生化及免疫检测法带来技术上的困难。在选择PCR、DNA探针等方法前,应考虑好选择合适的靶序列及引物序列。
3、DNA荧光染色法和直接培养法相结合是支原体检测的金标准。美国、加拿大、日本和欧共体国家生物制药及诊断的监督机构推荐使用这种方法。其基本原理在于利用不同的技术,多次检测,以弥补各种检测技术的缺陷,增加检测结果的可信度。
——摘自”细胞培养污染的途径、危害及预防措施“
李颖健等 肾脏病与透析肾移植杂志 1999年第3期第8卷
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misswu61[使用道具]
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支原体污染的判断cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=510121&sty=3&keywords=%D6%A7%D4%AD%CC%E5%CE%DB%C8%BE')
如果只是小颗粒,经传数代后对细胞活性和产物的表达没有影响,不需采取任何措施。也许只是培养液中的不稳定成分。我培养的细胞就有这种情况,最初没有小颗粒状物质,后来,细胞上和瓶壁上都有一些散落的颗粒。但是,细胞没受到任何影响,扩增速度正常,可以继续分泌目的蛋白。
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greenbee[使用道具]
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这种情况我也遇到过,细胞养的代数较多时出现,但又不影响细胞生长,用双抗没用,小黑点有时会游动。这应该时血清里的胶原虫,一般质量不太好的小牛血清里会有,建议换用优质的小牛血清,或者胎牛血清。看看有没有改善。
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yychen[使用道具]
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我用的胎牛血清也是一样,可以看到有小黑点在原地转动,转动时会有折光性的增强,可能是国产血清质量差导致.
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ero11[使用道具]
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我用的是invitrogen的新生牛血清,还是分装使用的,血清在显微镜下显示没有什么小颗粒,但细胞今天做免疫组化就发现有很多小黑颗粒
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BOSS2011[使用道具]
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免疫组化出现黑色颗粒

首先得要去排除枝原体污染

不知道楼主有没有做过检测

否则结果不会很好的吧?
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