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标题:【求助】细胞消化后,分散不开怎么办

xyw5[使用道具]
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【求助】细胞消化后,分散不开怎么办


我刚买了一瓶MCF-7细胞,用胰酶消化了10分钟,吹打了几百下,细胞还是没分散开,传代后贴壁也不是太好,怎么办那 。
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TNT[使用道具]
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试试用EDTA消化
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c86v[使用道具]
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培养液倒干净了?血清成分可抑制胰酶作用!还有加完胰酶后可在孵箱里多放一会儿!
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summerxx[使用道具]
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我没有养过这种细胞,但是我养过鼻咽癌细胞。这种细胞的贴壁能力很强,用0.5%胰酶(含0.1%EDTA)一般要消化12~15min。我的经验是细胞用PBS洗涤时要洗净残余的培养基,加入胰酶后在培养箱中消化(避免细胞室温下受损以及在此温度时胰酶活性最强)至细胞收缩变圆(可显微镜下观察)且有少许细胞脱落(有流下来的趋势),随后立即弃去胰酶(如果脱落的细胞很多且需要大量细胞实验,则不能弃去胰酶),加入培养基仔细吹打(不能用无血清培养基或者PBS替代,否则细胞聚集成团块或絮状)。一般我都离心一次弃去上清(去除残留的胰酶及漂浮的死细胞或细胞碎片)。
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yysr238[使用道具]
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养过这种细胞,的确比较难消化,但也不至于这么难吧?建议不要让细胞长得太满,因为这样很容易在消化时一团一团的下来,另外,加入新鲜培养液后吹打后,可以将其转移到离心筒中,用枪头再多吹打几次,在转移回去,这样可能效果比较好!
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idea2011[使用道具]
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谢谢各位的帮忙,细胞的确长得满了,也没有EDTA,下面我用各位的建议试一下看看
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xue258[使用道具]
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1.消化时间不够;加入培养液吹打因迅速
2.过于反复吹打对以及产生的气泡对细胞有损伤
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idea2011[使用道具]
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请问用EDTA消化,浓度是多少,时间如何控制?
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TAT[使用道具]
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0.02% EDTA , 5-10min, 显微镜下观察细胞消化情况
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junjie05[使用道具]
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加入胰酶之前最好先用PBS清洗2次,以防培养基中的钙、镁离子影响其消化能力
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