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不论有无胰岛上两层一般都应有细胞集中的絮状物,1)检查离心速度和时间,按其它文献标准做一般差别好象并不大。2)密度梯度值的设定,不知你用的什么样的密度梯度?3)纯化前洗涤时检测是否有胰岛,若前面本就没有,纯化也就没意文了。
配制的消化液和FICOLL需不需要消毒?若用过滤消毒,损失很多,好可惜,而且会导致浓度改变。若纯化后的胰岛需进一步培养检测功能或是作移植用那当然得消毒。消化液过滤消毒,FICOLL无法过滤,我们是分装后煮沸30分钟。
用双硫腙染色具体方法是怎样的?文献上说的不清楚,我昨天染了一次,没看见胰岛,我的双硫腙是这样配制的:10mg双硫腙+10mlDMSO配成储存液,没有稀释直接点到细胞涂片。我们以前是用5mg双硫腙+5mlDMSO+氨水一滴配成储存液,用时用HANKS稀释20倍,还可以用。现在用无水乙醇配的感觉胰岛颜色更鲜艳些,5mg双硫腙+3ml无水乙醇+浓氢氧化钠一滴+HANKS液12ml配成储存液,用时用HANKS稀释10-20倍感觉都可以。