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标题:【求助】胰岛分离的问题,郁闷

yysr238[使用道具]
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【求助】胰岛分离的问题,郁闷


我在分离胰岛时用的是胶原酶消化加FICOLL剃度离心法,可是离心后没有文献所说的几层明显的分层,不知道是什么原因,自己分析可能原因如下:
1消化时不能用摇床,这样细胞损失很厉害(摇死了);
2加FICOLL时要格外小心,以防不同浓度的FICOLL混合
另外听别人说,离心的时候离心机应该缓慢加速和件速,不知道是什么原因?
请有经验的朋友指导,谢谢!
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yysr238[使用道具]
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另外听别人说,离心的时候离心机应该缓慢加速和件速,不知道是什么原因?
防止界面混合!
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baidukk[使用道具]
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不知道您分离的是什么胰岛细胞?
 1)消化时用摇床不会摇散胰岛,只要震荡不剧烈,轻轻摇动有利于胰岛由外分泌腺中脱落。
 2)加FICOLL时一定要小心,倾斜30度慢慢沿管壁滴入。
 3)底层高密度液需适当多加,防止加样后稀释。
 4)离心由慢到快,我用的40*g三分钟,后400g十分钟,供参考。
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yysr238[使用道具]
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我分离的是大鼠胰岛细胞,文献上说离心后在上两层可见细胞集中的絮状无物,我做了几次,就是没有,不过细胞有相对集中的趋势,是不是离心速度的问题?速度不够?我也是缓慢加速和减速的。另外,配制的消化液和FICOLL需不需要消毒?若用过滤消毒,损失很多,好可惜,而且会导致浓度改变。用双硫腙染色具体方法是怎样的?文献上说的不清楚,我昨天染了一次,没看见胰岛,我的双硫腙是这样配制的:10mg双硫腙+10mlDMSO配成储存液,没有稀释直接点到细胞涂片上,好象不行。请指导指导
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baidukk[使用道具]
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回复 #4 yysr238 的帖子

不论有无胰岛上两层一般都应有细胞集中的絮状物,1)检查离心速度和时间,按其它文献标准做一般差别好象并不大。2)密度梯度值的设定,不知你用的什么样的密度梯度?3)纯化前洗涤时检测是否有胰岛,若前面本就没有,纯化也就没意文了。
  配制的消化液和FICOLL需不需要消毒?若用过滤消毒,损失很多,好可惜,而且会导致浓度改变。若纯化后的胰岛需进一步培养检测功能或是作移植用那当然得消毒。消化液过滤消毒,FICOLL无法过滤,我们是分装后煮沸30分钟。
  用双硫腙染色具体方法是怎样的?文献上说的不清楚,我昨天染了一次,没看见胰岛,我的双硫腙是这样配制的:10mg双硫腙+10mlDMSO配成储存液,没有稀释直接点到细胞涂片。我们以前是用5mg双硫腙+5mlDMSO+氨水一滴配成储存液,用时用HANKS稀释20倍,还可以用。现在用无水乙醇配的感觉胰岛颜色更鲜艳些,5mg双硫腙+3ml无水乙醇+浓氢氧化钠一滴+HANKS液12ml配成储存液,用时用HANKS稀释10-20倍感觉都可以。
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yysr238[使用道具]
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我用的密度是25%,23%,20%,11%这几个梯度,按照文献上说的,因为离心后在上两层主要是胰岛细胞和导管上皮细胞,我要的是导管上皮细胞,染色胰岛并不是主要目的。
另外你在配制消化液时是否加了小牛血清白蛋白和大豆胰蛋白酶抑制剂?对消化后的细胞活性是否有改善?我在配制时加了,但过滤很困难。
谢谢你的指导
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baidukk[使用道具]
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我们没有在消化酶中加小牛血清亦未加大豆胰蛋白酶抑制剂,无这方面的比较经验,不过有不少文献认为可减少胰酶释放后的致胰岛损伤作用,想来是可改善细胞活性的。
另你说:“我用的密度是25%,23%,20%,11%这几个梯度,按照文献上说的,因为离心后在上两层主要是胰岛细胞和导管上皮细胞” 有文献讲离心后的导管上皮细胞也在上两层吗?似与我所查的有差别,能附上原文吗?
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jujuba[使用道具]
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有人用Dextron 分离效果很好,而且先开始胶原酶消化15分钟,最后用力甩碎胰腺即可,无须摇床
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one[使用道具]
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没有这么麻烦吧。其实,还是很好分离的。
我们消化液里没加什么东东,离心的时候,加速减速都用的最大。有一个步骤,离心2500rpm,半个小时,胰岛很好啊
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我也在做胰岛分离,想请教一下
1.消化后洗涤,过滤后重悬在25%ficoll什么意思,是用吸管一直吹打,直到完全散开么?
2.我分层离心用的9号长针头将11%、20.5%、23%、含有胰岛悬液的25%ficoll依次加入,会不会在吸入得时候会损伤细胞
3.形成的胶体怎样避免,我发现胶体出现时基本不会再离心出来
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