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标题:【求助】神经干细胞培养失败N次----SOS

yjf1026[使用道具]
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【求助】神经干细胞培养失败N次----SOS


三个月前,我们培养神经干细胞一直很成功,但从7月份起,我们始终无法再培养成功!症状如下:1、取材步骤同以前,接种后观察,绝大多数是折光性强的单细胞,死细胞和组织块极少;2、第二天发现培养瓶中几乎全部细胞都悬浮,并被一种粘稠的物质粘成一长索状,肉眼观似鼻涕,镜下见大量细胞死亡,形成碎屑!3、这种情况日渐加重,4-5天后,绝大多数细胞已死亡;4、虽然偶尔也可形成一两个神经球,但状态极差,不能贴壁,一周后也死亡;5、不会出现培养基混浊,酸性变的情况,似乎不象污染;6、同一培养箱中的PA317细胞和293细胞生长良好。
我们曾经为此改变了许多实验条件:1、改用含血清的培养基(用于培养PA317细胞和293细胞完全正常);2、改用其它品牌的新培养瓶;3、改用其它滤网;4、改变胰酶消化液种类和浓度、消化时间;5、改用培养基漂洗(代替PBS或Hanks);6、订用新的生长因子和B27;7、请其它实验人员来取材;8、消毒,添加抗生素。但是,每一次总是重复同样的结果,已经要影响到毕业了,实在让人绝望......
恳求细胞培养高手指点!
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现在附上照片几张


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上一张是我们取细胞后静置细胞培养箱中约半小时后出现的情况。
肉眼就可以观察到细胞培养瓶底壁上附着一些粘稠物,
镜下情况如图,大量的细胞好像被什么东西“网”住了一般,
成束成团的出现。

注:刚刚取好细胞的时候在镜下是非常清爽的(如pheiphei所述)。

图2是成束出现的细胞带,而其他部位细胞就变得极为希少。


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图3是24小时或者是48小时后,原先成团出现细胞团的改变。
细胞活力很差,而且许多已经开始皱缩、死亡,细胞碎片也很多。


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图4 是偶尔在原先细胞团、束的地方出现的神经球
一般在培养48小时后出现
其细胞活力欠佳,而且可以看到神经球之间有一些絮状、条带样物连接
这些就是最早的时候出现的“网”住细胞的东东

这些神经球我们在加血清的DMEM/F12培养基中培养,并放置有多聚赖氨酸铺被过的盖玻片。未见有分化,细胞状态也未见好转。


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补充说明及疑问:
1、在取材的整个操作过程中,到300目(孔径是否太小?是否对细胞有影响?)细胞滤网过虑、然后离心、去上清液,再加培养基进行重悬——这个时候问题就已经出现了。重悬的时候,用滴管吹打离心沉淀下来的细胞(或还有其他东东),出现的是絮状物,不易吹开吹散。
2、接种到细胞瓶中的时候,细胞状态非常好。细胞的折光性很好,绝大多数是单细胞,碎片也不多,没什么组织块的(300目滤网过虑的)。
3、图1、图2出现在接种后半小时,12-24小时尤其明显。

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yjf1026[使用道具]
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非常感谢楼上给我们的建议,谢谢您的帮助!^_^
并请教您说的“增加消化次数和时间”中,增加消化次数是什么意思?
是消化结束后,再换新的消化液再次消化吗?
还有,一般你是用多少浓度的胰酶、消化多长时间阿?

接下来我们会在消化这一环节上再做尝试。

同时恳请广大战友能给予我们帮助!
谢谢!
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yjf1026[使用道具]
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根据你的指教,我们改善了胰酶消化条件,细胞确实有明显不同,但现在观察时间还太短,正在进一步试验!
可能我们一直太保守,不敢高浓度长时间的消化,谢谢!
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huifeng0516[使用道具]
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我在培养神经干细胞时也出现过这种情况,我任为你可能是消化细胞时间过长,细胞核裂解释放出粘稠的RNA。如果你取的是胚胎tissue我建议不用胰酶消化,直接机械分离,过200目网试一下。
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jkobn[使用道具]
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我觉得你细胞消化存在问题的可能性比较大.消化时我们采用分段消化:首先按PBS:0.25%胰酶=2:1的比例加入胰酶,边消化边吹打,消化3分钟左右,收集第一批细胞,用含血清的培养液中和所收集到的细胞中残存的胰酶.剩余的组织块按PBS:0.25%胰酶=1:1的比列加入胰酶,吹打消化5分钟,收集第二批细胞,同样用含血清的培养液中和细胞中的胰酶.剩下的组织快最后用0.25胰酶消化8分钟左右(不加PBS,不超过10分钟).收集细胞,加含血清的培养液中和胰酶.最后合并细胞离心后用培养液重悬细胞进行培养.

一般消化两次,细胞已经够用了.

我觉得你的细胞消化过度了,条索状的粘稠物可能是细胞碎片和组织快聚集成的,细胞慢慢死亡是因为细胞受到胰酶损伤较严重.
如果还是不行,换用胶原酶,效果也许会好许多.
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