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标题:【求助】MTT的两点疑惑,望高手解答之!

喇叭花[使用道具]
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【求助】MTT的两点疑惑,望高手解答之!


1.双波长和单波长检测:用570nm和630nm双波长检测得出的最终结果在0.1-0.3之间,不加任何东西的空白孔测出来是0.001;
用570nm单波长检测得出的结果在0.2-0.6之间,不加任何东西的空白孔测出来是0.038
统计分析出来用单波长检测的方差齐性,且各处理组之间的差异有统计学意义。但双波长的结果方差不齐。Why?一般较好的吸光值在什么范围?
2.关于裂解液:加MTT后四小时,直接加100ul三联裂解液,37度放置过夜。问题是这裂解液太Smelly,能不能放在室温,不放培养箱?作用时间能不能缩短到一两个小时?
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yapuyapu[使用道具]
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我不是太明白你为啥要做单波长和双波长的比较,一般用MTT法测我只看到用570nm测得(当然也有可能是我知识有限),我附了一些相关的文献。在这我说说我的方法:培养板中加入MTT,终浓度为0.5mg/ml,继续培养4~6h,吸去培养基,加入200ul含10%SDS的0.01mol/L HCl,37°C振摇,待紫色结晶完全溶解后,将溶液全部吸入96孔塑料培养板中,用DG-3022型酶标仪测定A570nm值,以A570nm值代表细胞活力。你也可以用DMSO代替含10%SDS的0.01mol/L HCl,效果没明显差异!
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我并非特意去做单波长和双波长的比较,只是双波长检测得出的最终结果在0.1-0.3之间,而用570nm单波长检测得出的结果在0.2-0.6之间,感觉单波长检测得出的结果更符合我心目中的数据。但好像双波长检测又更为科学。由于两种检测得出的统计学结果不同,所以我不知道到底差异是不是显著。
关于裂解液,我DMSO,三联裂解液和酸化SDS都试过。由于没有平板离心机,在吸去培液时,很容易损失结晶,造成误差,故用三联裂解液,不用吸去培液,而且在长时间内吸光值很稳定。对于这个问题,我昨天观察了一下,加入裂解液8小时,还是有约三分之一的结晶没溶。所以过夜加37度助溶还是有必要的。
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yapuyapu[使用道具]
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好像你们的实验条件比较好,呵呵。我只针对你的回复说一些:1)数值是否在仪器的准确读数范围确实是要考虑的,但我觉得,如果对溶解试剂的量进行一些微调,可能也能达到你的要求;2)我们也没有平板离心机,我们采用的方法是,直接加MTT,用移液器吸去孔中液体(枪头每次都是只碰孔最下端,使损失也大致平行),加溶解液。觉得整个实验中要想做到100%精确比较困难,一些地方只能说尽量,我们发现这样操作基本不影响实验结果。
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我也即将做这个MTT,还没有经验,但是附上我老板博士后文章的做法,不知对你有没有用,希望以后多多交流: 致密单层细胞经细胞因子或药物作用后,用冰冷的PBS液洗涤2次,加入0。5mg/ml MTT 100ul ,37度掺入4h,吸去残留液体,加入酸化异丙醇显色溶液100ul,30min内在595nm处用酶标仪测A值。观察细胞因子和药物对培养细胞生存的影响,选择合适的细胞因子和药物浓度。
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tangxin_80[使用道具]
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我们加入MTT后,因为也是没有平板离心机,所以用小的ep管离心后,在加回孔中,每孔加150ulDMSO终止,然后用酶标仪测,只是用单波长测,我们的测量波长因细胞不同,用的是492nm,因为同样的样品反复做了多次,结果还可以。
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tangxin_80[使用道具]
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另外想指出的一点是所谓双波长,一个指参考波长,一个指测量波长。
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喇叭花[使用道具]
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这我知道,所以觉得用了参考波长去除了一些非特异性光吸收,照理得到的结果比单波长的更准确才是。但拿双波长得不到我想要的结果,所以想知道拿单波长得到的结果能说明问题吗
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wu11998866[使用道具]
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我也是用490nm测的,不知道为什么每次数据都偏小,数据最大都在0.4之下,而且总是出现三个平行孔不平行,比如两个有颜色,一个无色
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wu11998866[使用道具]
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加MTT之前,要去掉原来的加药培养液吧,接着要用PBS洗涤吗?
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