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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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你好!我这有个结果想让你帮忙看一眼。
这个图上有野生型和重组型两种的细胞蛋白,一抗分别是针对GFP的多抗和针对m2 tag的多抗(这个是鸡多抗,故背景很多杂带),二抗是抗兔或抗鸡的。我的蛋白是融合的M2-EYFP,为什么图中都是三条带呢?请教过有个老师,他分析是isoform,你怎么认为?
谢谢先

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这几天我刚做了GFP的抗体检测与GFP标签蛋白裂解液的检测
我认为你请教的那个老师说的有道理
GFP有时会有小片段存在
另外一抗的稀释度调整下
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NBA[使用道具]
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六一的电泳仪湿转,仪器说明书上说是80mA 两小时之内完成,转65kD的时候可以做出来,但是同样条件做130kD没有条带,转膜时间延长至3小时,还是没有条带,麻烦指导一下。不胜感激!
电流能否改成100mA或者更大?
时间三小时还是再长一些?

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25mM tris
192mM glycine
20% methanol
0.1%SDS
配制完成后放置四度冰箱预冷
转膜时降温
130KD还是很好做的
300mA恒流 2h10min
祝你好运
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lixi559[使用道具]
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TBST的PH值6.0是不是对抗体结合有影响?
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如果曝光出来,泳道之间是黑色的,就是相邻泳道之间都是黑色的,什么原因呢?
是非特异性结合么,特异性不好导致?,为什么会在泳道之间曝出条带?
请指教.
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TBST的PH值6.0是不是对抗体结合有影响?

===============================

抗体在中性环境下最稳定
pH5-8左右都可以
最稳定是7左右
另外稀释抗体的时候加了奶粉等
可以对抗体起一定的保护作用
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如果曝光出来,泳道之间是黑色的,就是相邻泳道之间都是黑色的,什么原因呢?
是非特异性结合么,特异性不好导致?,为什么会在泳道之间曝出条带?
请指教.

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相邻的条带都连在一起吗?
上样量多少ug?
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冰儿0109[使用道具]
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请问,分离胶凝后会在胶和玻璃板之间有小气泡,且都在板的两侧,胶中没有气泡。碰到过好几回这样的,板都洗的很干净,也不是同一块板,年前做的时候还没这样呢,就最近老这样,请问到底是怎么回事,怎么才能避免啊,谢谢了
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wmp1234[使用道具]
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我这两天做的结果背景较脏,并且有的时候没有信号。今天做封闭的时候发现前两次的封闭液配成了10%的脱脂奶粉。我想问一下,10%的脱脂奶粉对western 有什么样的影响。
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请问,分离胶凝后会在胶和玻璃板之间有小气泡,且都在板的两侧,胶中没有气泡。碰到过好几回这样的,板都洗的很干净,也不是同一块板,年前做的时候还没这样呢,就最近老这样,请问到底是怎么回事,怎么才能避免啊,谢谢了

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APS与TEMED的加的量有什么变化?
现在温度升高了
这两者的量是随温度变化而变化的
温度高要少加一些
可能是凝胶速度快
另外插梳子的时候要注意看
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我这两天做的结果背景较脏,并且有的时候没有信号。今天做封闭的时候发现前两次的封闭液配成了10%的脱脂奶粉。我想问一下,10%的脱脂奶粉对western 有什么样的影响。

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10%的脱脂奶粉不会有什么问题
我怀疑你重复使用一抗
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