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标题:【求助】求问52KD、70-80KD分子量蛋白转膜时间?

jude[使用道具]
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【求助】求问52KD、70-80KD分子量蛋白转膜时间?

做的蛋白分子量为52KD、70和80KD,湿转,Bio-Rad Basic转膜仪,转膜液中加20%甲醇,不加SDS,膜是0.45um PVDF膜。。。。求问有经验的朋友推荐转膜时间?
前几次试了300mA 2h,结果都不好。今天改为200mA 90分钟,膜上预染marker还是比较清楚的,连最小的条带都留住了,但曝光时仍然是条带荧光非常弱,有时肉眼几乎看不见,压片后有时有泳道还会没有条带出来,相同样品的结果重复性差。不知道这种情况的原因可能是什么?是转膜过了还是转膜不够?(胶上和膜后滤纸都没有预染marker的印子)。。。

我查了文献 有推荐转膜恒压50V 60min的,但作者没有注明是湿转还是半干转。。。另外查资料有人推荐是湿转90V 60min,不知道有没有人试过,效果如何?

转膜恒流和恒压有何区别?该如何选择呢?

附图:
300mA转内参 a-tublin:


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jude[使用道具]
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200mA 90min转内参:有泳道没有条带,貌似也没300mA的好。


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mimili_901[使用道具]
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个人觉得恒流转膜,在转膜过程中恒压的话电流越来越小,分子应该是随着电流过去。 泳道不均一应该是要考虑三明治压实,同时最外侧边道上loadingbuf
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remenb[使用道具]
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你这个话就是想当然了。估计你平时是恒流转膜,没做过恒压转膜。在恒流的情况下,随着时间的延长,电压会逐渐下降。但是在恒压的情况下,随着时间的延长,电流也是逐渐升高的。
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remenb[使用道具]
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楼主做的几个蛋白分子量比较常规,建议你恒压转膜试试看,80V,90min,经验之谈。
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wu11998866[使用道具]
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我们实验室是350mA,2h,湿转.大家做这几个分子量的做的都很好
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jude[使用道具]
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我们实验室是350mA,2h,湿转.大家做这几个分子量的做的都很好

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谢谢,关键你们用的是0.45um的还是0.22um的PVDF膜呢?
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mimili_901[使用道具]
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我用的是0.22um的PVDF膜,湿转70伏,2个小时。也不错。
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白白的[使用道具]
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我的有个分子量是75kDa,用的湿转,5%甲醇,恒流200mA,2.5个小时,之前做的都不太好,后来有一次忘了加甲醇,反而出来了,条带很清晰。我用的膜是0.45um的NC膜。
后来在网上查了,说甲醇是为了对抗SDS的作用的,甲醇会缩小凝胶的孔径,阻止大分子量的蛋白从胶上转移出来,不知道楼主的甲醇含量是不是太高,可以试着降低或者不加试试,如果标本不是特别珍贵的情况下,毕竟我的经验有限,弱弱的在这发表一下意见,希望可以帮助到您,但是也希望不要误了您的大事,祝实验成功!
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阿k[使用道具]
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我 80v 1.5h 做出来过
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