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标题:[未解决]关于蛋白乳化性测定

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大球球[使用道具]
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关于蛋白乳化性测定

最近在做蛋白乳化性,用的是离心法,发现在测定乳化稳定性时,油层和乳化层分的不清,混在一起,尝试过调整浓度,油水比例,均没有什么明显效果,不知哪位兄弟姐妹解决过类似的问题,还请赐教一二,不甚感激!
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美丽婷婷[使用道具]
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测蛋白乳化稳定性需要二次离心,你有没有离心呢?我也在做乳化性,用的是分光光度法,不用离心,乳化好了底部取样加一定SDS在500nm测吸光度。
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双_视野[使用道具]
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你好~我最近是在做乳化性也是用的分光光度法,可是平行性太差了。。。麻烦问下 加入SDS溶液后需要混匀的吧 可是稍微震荡就会好多泡沫呀,测定值可信度高么?500nm测定还要用SDS溶液做空白么?
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千里之外[使用道具]
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虽然分光光度法很经典,用的也很多;但现在被人家质疑的很厉害,现在有些人已经改用粒度法来测定了。
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grace![使用道具]
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我现在做的全是分散后,取底部溶液溶到SDS中测吸光值,这是目前通用的方法,粒度法还不如这个,本来功能性的测定时就是一个很模糊的概念,所以一般解释起来不容易也会受质疑~~
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巅峰时刻#-#[使用道具]
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我以前做的也是不用离心,用分光光度法测就行
个人经验啊 仅供参考~~
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hero_b[使用道具]
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高速离心处理,不行再离一次,肯定可以的
希望对你有帮助!!!!
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apple_danny[使用道具]
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离心的 (g)的大小和离心的时间直接影响分层的效果啊。
楼主加油~
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apple_danny[使用道具]
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以相同均质条件下均质后测定的粒度大小代表乳化性(粒度越小,乳化性越好),放置一段时间(比如24h,一周)后再测定其粒度大小,粒度变化越大(粒度增加)表明乳化稳定性越差。
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today@[使用道具]
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我也在做水包油型的乳化体系,用的3000r/min,15min离心后在540nm测定吸光度的方法来评价乳化稳定性的。测定的吸光度值挺稳定的。
现在唯一的问题就是:油水比一定,蛋白质含量或种类不同,是不是对乳化体系会造成很大的影响??
现在目前体系我用的酪蛋白酸钠,这个体系基本稳定了,但是在这个体系里面多加一种蛋白质--大豆肽,结果就很不稳定了(测定的是吸光度)
请教高手!交流!
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