蛋白质与蛋白组学 » 讨论区 » 经验共享 » 【求助】求助western blotting检测小分子蛋白的经验

采购询价

点击提交代表您同意 《用户服务协议》 《隐私政策》

 
需要登录并加入本群才可以回复和发新贴

标题:【求助】求助western blotting检测小分子蛋白的经验

@STAR@[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74483
精华 0
积分 464
帖子 506
信誉分 101
可用分 3456
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-11
状态 离线
1
 

【求助】求助western blotting检测小分子蛋白的经验


请教哪位WB高手,我现在做人β防御素2(hBD2)的WB检测,蛋白标本来自肺上皮细胞总蛋白提取液,我的分离胶用15%的胶,上样量为80ug/孔,电泳条件为70v(浓缩胶)、120v(分离胶),电泳后marker在胶上清晰可见,最小分子量的一条marker为10kd也可以清楚看到,我的目的蛋白hBD2分子量为7kd(abcam一抗,说明书上提示该产品分子量为7kd),故电泳后切胶时,在10kd以下切1cm宽的胶进行转膜;“三明治”夹的搭建应该没有问题;我的转膜条件为:湿转,300mA,50min,用的膜是0.22um PVDF膜(millipore);5%脱脂牛奶室温封闭1.5h;abcam一抗1:750 4°C孵育过夜,HPR标记二抗(进口分装)1:2000,室温孵育2h;洗膜均为TBST(含0.1%吐温)10min×3次;最后ECL发光(pierce公司产品),内参选用GAPDH,内参条带非浓,很容易曝光,但是目的蛋白至今未能做出来(已经近1个月了),心情极度沮丧,不知哪位老师能指点迷津,哪些步骤需要改进?期待您的回复,非常感谢!
另外说明一下,我提取的总蛋白,做其他指标(分子量为100kd,转膜条件为300mA,1.5h,用的膜为0.45um)是有条带的,可是是做hBD2没有任何条带让我看到!
顶部
zzzz[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 74598
精华 1
积分 656
帖子 967
信誉分 102
可用分 5638
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-12
状态 离线
2
 
300mA这么大的电流,蛋白又那么小,肯定转过了!我转过ChLYZ的,分子量只有14.5kDa,转膜30mA,30min,条带相当好看~你可以试试
顶部
@STAR@[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74483
精华 0
积分 464
帖子 506
信誉分 101
可用分 3456
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-11
状态 离线
3
 
请问楼上,你用的也是湿转吗?据我现在查看的有关WB技术资料,30mA这么低的电流,好像是半干转的吧?!
我好困惑啊!
顶部
@STAR@[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74483
精华 0
积分 464
帖子 506
信誉分 101
可用分 3456
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-11
状态 离线
4
 
最近查看了好多帖子,有的说“10kd的目的蛋白,湿转,恒压80v 90min或者横流200mA 90min左右转膜,我敢保证不会转超过去”,还有的说“10kd的目的蛋白,湿转,300mA,40-50min”,我真的好困惑,到底怎样比较好,还是多没有关系呢?!
顶部
yes4[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 77377
精华 0
积分 764
帖子 1145
信誉分 101
可用分 6575
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-11-16
状态 离线
5
 

300mA,50min 肯定转过了 参考下别人文献上的试试(毕业论文上的条件很清楚) 可以染一下胶和膜看看 条件要慢慢摸索的 希望楼主早点曝出条带
顶部
greenbee[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79370
精华 0
积分 710
帖子 1119
信誉分 100
可用分 6368
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-10
状态 离线
6
 

汗一个!真心不好意思,我用的是半干转
顶部
redbutterfly[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 76433
精华 0
积分 701
帖子 1102
信誉分 100
可用分 6281
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-11-5
状态 离线
7
 

我也一直在做小分子,比如caspase3(15kD)的WB,开始总是不出,但是这两次好了很多,总结经验就是:
1. 转膜液中不要加SDS
2. 转膜条件130mA 1h(不要超过1h)
3.最好使用0.22 PVDF
楼主可以试试,好运哦~~
顶部
@STAR@[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74483
精华 0
积分 464
帖子 506
信誉分 101
可用分 3456
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-11
状态 离线
8
 
前天做了一次,转膜液中不要加SDS了,转膜条件是200mA, 70min,使用的是0.22 PVDF膜,昨晚曝光,还是没有条带,哎,伤心欲绝啊!昨晚睡眠中朦朦胧胧浮现的,全是WB实验啊!
我想请教各位同仁,我做这个小分子量蛋白,每次条带都没有,但每次曝光,整张膜背景非常高,如果曝光时间5min,整张膜全部发光,非常亮,不知道大家是否知道这是什么原因啊!
期待大家的帮助!
先谢谢大家了!
顶部
u234[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 77031
精华 0
积分 691
帖子 1081
信誉分 100
可用分 6196
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-11-12
状态 离线
9
 
前天做了一次,转膜液中不要加SDS了,转膜条件是200mA, 70min,使用的是0.22 PVDF膜,昨晚曝光,还是没有条带,哎,伤心欲绝啊!昨晚睡眠中朦朦胧胧浮现的,全是WB实验啊!
我想请教各位同仁,我做这个小分子量蛋白,每次条带都没有,但每次曝光,整张膜背景非常高,如果曝光时间5min,整张膜全部发光,非常亮,不知道大家是否知道这是什么原因啊!
期待大家的帮助!
先谢谢大家了!

===========================================================================================================

抗体不行?个人觉得western抗体因素应该是最主要的,看看你的抗体文献中有做出来的吗~
关于背景高,可能是封闭不够,或发光液过多,曝光时间过长导致
我发光通常都是在PE手套上,滴上发光液,把膜正面倒扣在发光液中,孵育1min左右,曝光时间一般不超过30s,目前对于绝大多数蛋白效果都挺好的
~
顶部
@STAR@[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74483
精华 0
积分 464
帖子 506
信誉分 101
可用分 3456
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-11
状态 离线
10
 

抗体文献中是有做出来的。
我也曾用过PE手套的方法,但是发现如果曝光时间长一点的话,就会整个背景看到PE手套上的那种小点点,所以,后来就改用在干净、干燥的塑料10cm培养皿里曝光。
谢谢“龙葵军医”的热心帮助,希望如果有谁对小分子蛋白WB有经验的,多多给我指点,谢谢大家!
顶部