蛋白质与蛋白组学 » 讨论区 » 经验共享 » 【讨论帖】Ni柱纯化蛋白结果,敬请批评。

采购询价

点击提交代表您同意 《用户服务协议》 《隐私政策》

 
需要登录并加入本群才可以回复和发新贴

标题:【讨论帖】Ni柱纯化蛋白结果,敬请批评。

如影随形[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 70421
精华 0
积分 201
帖子 142
信誉分 100
可用分 1466
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-8-10
状态 离线
1
 

【讨论帖】Ni柱纯化蛋白结果,敬请批评。


这是我第一次用Ni柱纯化的蛋白SDS-PAGE结果:左侧是分子量标记,右侧最亮的条带是目的蛋白,但是还有不少的杂蛋白污染。不知这样的结果怎么样?是不是分离纯度太低,需要改进?我分离蛋白采用的是细菌包涵体变性裂解方法。主要的目的是纯化蛋白制备单抗。采用的NI是NOVAGEN(NI-NTA HIs bind Resins)产品。步骤完全照说明书进行。


查看积分策略说明
附件
2013-5-13 16:53
26715733.jpg (4.64 KB)
 
顶部
moonlight45[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 79769
精华 0
积分 487
帖子 654
信誉分 100
可用分 4096
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-15
状态 离线
2
 
这样的结果做单抗恐怕不行。
增加washing buffer 的量,延长洗涤时间或增加咪唑浓度。
顶部
finger[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 71816
精华 0
积分 574
帖子 787
信誉分 100
可用分 4799
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-8-31
状态 离线
3
 

我给你发了份相关的材料,包括不同金属粒子的选择性和分离效果,只在做试验的时候把一般的缓冲液换成8M脲或者6M盐酸胍即可,以前也遇到有人问这个问题,它参照这个材料的方法就没事了,其实纯化没有那么简单,照规程一定能做好的,我们最近经常做带his标签蛋白纯化,无论是包涵体还是别的都没有问题。
顶部
fei1226com[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79957
精华 0
积分 599
帖子 898
信誉分 100
可用分 5286
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
4
 

Ni柱纯化少量目的蛋白,已经进行了两次都含有很多杂带,想问问有那些原因?
顶部
summerxx[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 75852
精华 0
积分 885
帖子 1388
信誉分 101
可用分 7783
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-28
状态 离线
5
 

你可以在后面增加一步离子交换能达到不错的效果
顶部
orangecake[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 77305
精华 0
积分 512
帖子 724
信誉分 100
可用分 4431
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-11-15
状态 离线
6
 
非特异性结合为主要原因,可以增加一些表面活性剂,同时可以尝试一下不同的金属离子和洗脱方法,比如ph梯度洗脱,有时候固定化金属螯合层析不是我们想象的那么好,很多人遇到过这样的问题,也有很多人提过,其实可以看出并不是所有的蛋白都适合这个表达体系。
顶部
IAM007[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 75217
精华 0
积分 464
帖子 608
信誉分 100
可用分 3861
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-20
状态 离线
7
 

虽然你用的Ni柱是亲和纯化,但是并不是说亲和纯化一步就能得到非常纯的蛋白,一般都要加一些其它的分离纯化步骤,想你这样的结果,只通过改变Ni柱的分离纯华条件可能很难有大的突破.你可以根据你的蛋白的等电点增加DEAE或是sp柱子,或者考虑别的柱子!祝你成功!
顶部
ero11[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 75131
精华 0
积分 684
帖子 1028
信誉分 100
可用分 5953
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-19
状态 离线
8
 

其实分离的好坏关键看分离条件,在金属螯合层析其实可选择:镍,铁,钴,铜,锌钙等离子,每种选择性都不同,洗脱的条件也是很有讲究的,包括重组蛋白HIS标签的位置都有很大的影响,因此其实没有哪种纯化是可以象试剂盒上写的操作规程那么简单。
顶部
ero11[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 75131
精华 0
积分 684
帖子 1028
信誉分 100
可用分 5953
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-19
状态 离线
9
 

试试提高一下你的lysis buffer中的imidazole的浓度,从10mmol/L试起,包括20mmol/L、甚至可以到30mmol/L。这样柱子的特异性会提高些,但是,你的目的蛋白可能要损失大一些。对了,目的蛋白与柱子结合的时候最好不要用过柱的形式,把含有目的蛋白的细胞裂解液与柱子颗粒一起放在小锥形瓶中,用摇床孵育1h左右,然后再装柱洗脱,这样可能会好一些。仅供参考!
顶部
yueban-1147[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 75776
精华 0
积分 692
帖子 1064
信誉分 100
可用分 6113
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-27
状态 离线
10
 
试试提高一下你的lysis buffer中的imidazole的浓度,从10mmol/L试起,包括20mmol/L、甚至可以到30mmol/L。这样柱子的特异性会提高些,但是,你的目的蛋白可能要损失大一些。对了,目的蛋白与柱子结合的时候最好不要用过柱的形式,把含有目的蛋白的细胞裂解液与柱子颗粒一起放在小锥形瓶中,用摇床孵育1h左右,然后再装柱洗脱,这样可能会好一些。仅供参考!

===========================================================================================================

关于NI与目的蛋白结合的时间,我有些疑问:Protocol上讲Ni与HIS TAG的结合能力强与抗原抗体反应,我因为作流式较多,知道一般的抗原抗体反应30min就可以得到很好的效果。而Protocol也说反应15-60min。是不是反应的时间过长会造成非特异性结合?一般的反应有必要反应到60min吗?是不是20min就可以了,这样反而可以减少非特异性结合。
顶部