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标题:【求助】sds page问题,求教大神!

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【求助】sds page问题,求教大神!

做了很多次page。每次空白跑出来和目的菌一样的,根本找不到目的条带,仪器是biorad电泳仪。
目的蛋白大约为37kd。
条件如下:
1.从含目的质粒的原始菌株接种到LB固体培养基,过夜培养,取单克隆接种到2ml LB液体培养基中,过夜培养。作母液。将空白菌接种到不含氨苄的培养基中,过程同前。氨苄浓度100ug/ml。

2.将母液以1:50 加入2ml液体培养基中,过夜培养,加入1mM的iptg。继续培养6小时左右。因为科室没有摇床,都是静置培养。
3.一共培养了七管,一管没加IPTG,其余六管加IPTG浓度分别为0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、2.0(单位mM)。
4.菌体经12000转离心十分钟,弃上清,PBS清洗两次,加入80ulPBS重悬,在加入20ul 5X上样缓冲液。100°沸水煮5分钟。12000转离心十分钟。
5.分离胶缓冲液1.5mmol/L Tris-Hcl(Ph8.8):18.15gTris和48ml1mmol/L Hcl混合。加水稀释至100ml终体积。室温保存。
浓缩胶缓冲液0.5 mmol/L Tris-Hcl(Ph6.8):6.05gTris溶于40ml蒸馏水中,用约48ml 1mol Hcl调制ph 6.8.加水稀释至100ml。
Tris-甘氨酸电泳缓冲液:3.03gTris、18.8g甘氨酸、1gSDS用蒸馏水溶解后定容至1L。
考马斯亮蓝染液:0.5g G250考马斯亮蓝溶于100ml甲醇,加入20ml冰乙酸,蒸馏水定容至200ml。

脱色液:250ml甲醇+50ml冰乙酸+700ml蒸馏水

6.清洗1.5mm玻璃板,清洗架子,清洗电泳槽,晾干待用。

12%分离胶(10ml) 4%浓缩胶(5ml)

蒸馏水 3.3ml 3.4ml

丙烯酰胺 4.0ml 0.83ml

缓冲液 2.5ml 0.63ml

10%SDS 0.1ml 0.05ml

10%AP 0.1ml 0.05ml

TEMED 4ul 5ul

7.取上清20ul上样。先用80v电压跑30分钟,然后用120v电压跑一个半小时左右,知道所有的上样缓冲液跑出,然后停止,小心切胶,将胶放入考马斯亮蓝染色液染半个小时,然后用脱色液脱色。跑出来如图.目标菌的条带与空白一样,再者IPTG好像没起作用,但是上清用化学发光法测定有高浓度的目标蛋白。已经做了很多次,不知道什么原因。请各位大侠帮帮忙。
1.空白(不含目的质粒)2.目标菌(没加IPTG)3-8目标菌(分别加0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、2.0mMIPTG)


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tangxin_80[使用道具]
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”上清用化学发光法测定有高浓度的目标蛋白“, 是用特异性抗体做的WB吗?

如果上清用western blot做出来了,建议用TCA或者硫酸铵将上清沉淀后,再跑电泳。
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有抗体的话做个western把,cbb条带太多,分不清的。
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这种问题很常见,可能有几个原因:
1.你的质粒构建有问题,可能有突变等什么原因,不知你构建成功后有没有测序验证?
2.你的质粒在你的诱导条件下不表达,部分蛋白不知什么原因不表达或表达量太低,导致很难肉眼观察到。
你可以向某些战友说的用western检测,也可以直接用亲和柱强行纯化,看能不能得到蛋白。
如果能检测到微量表达,你可以尝试不同培养条件,宿主细胞、载体等,增加蛋白的表达。
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junjie05[使用道具]
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1,电泳跑的不错,条带清晰;
2,没有摇床静置培养,即使所有的其它的东西都是正确的,表达肯定不会好的;
3,“但是上清用化学发光法测定有高浓度的目标蛋白。”你这个上清是什么上清?跑电泳的上样液?还是培养的物的上清?如果是后者,该是分泌表达,你拿菌体破碎物做出电泳条带,那才奇怪。如果是前者——你电泳上样的样品不是菌体用Loading buffer悬浮煮沸的吗?怎么做化学发光?
4,“做了很多次page。每次空白跑出来和目的菌一样的,根本找不到目的条带,仪器是biorad电泳仪。
目的蛋白大约为37kd。
条件如下:
1.从含目的质粒的原始菌株接种到LB固体培养基”
是不是应该写成:……每次目的菌跑出来和空白菌一样……将含目的质粒的原始菌株接种到LB固体培养基”。呵呵
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如果表达量很低的话看不到条带是正常的, WB显示有表达的话可以直接摇500ml菌液尝试纯化。

如果用8%的胶的话, IPTG诱导后的泳道里应该能看到230kDa的半乳糖苷酶条带,有的话就表示诱导没问题。
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1,电泳跑的不错,条带清晰;
2,没有摇床静置培养,即使所有的其它的东西都是正确的,表达肯定不会好的;
3,“但是上清用化学发光法测定有高浓度的目标蛋白。”你这个上清是什么上清?跑电泳的上样液?还是培养的物的上清?如果是后者,该是分泌表达,你拿菌体破碎物做出电泳条带,那才奇怪。如果是前者——你电泳上样的样品不是菌体用Loading buffer悬浮煮沸的吗?怎么做化学发光?
4,“做了很多次page。每次空白跑出来和目的菌一样的,根本找不到目的条带,仪器是biorad电泳仪。
目的蛋白大约为37kd。
条件如下:
1.从含目的质粒的原始菌株接种到LB固体培养基”
是不是应该写成:……每次目的菌跑出来和空白菌一样……将含目的质粒的原始菌株接种到LB固体培养基”。呵呵

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1.谢谢!我是新手,基本没经验,都靠自己摸索在搞。
2.没办法。临床的就是这么悲催,毕业论文。科室条件简陋。
3.上清是我裂解离心菌体后得到的上清,沉淀用PBS溶解。我做的是肌钙蛋白T,用罗氏化学发光测上清和沉淀都能测到高浓度的肌钙蛋白T,空白菌测出来的有肌钙蛋白T,但浓度很低,但每次跑出来都和空白菌差不多。没有找到多出的条带。怀疑产生包涵体,我也试过用8M尿素溶解过沉淀,跑出来在37KD附近的条带深一些。如下图,第二、第三泳道是空白菌,第二泳道是空白菌沉淀,第三泳道是空白菌上清,第四泳道是目标菌沉淀用8M尿素溶解。
4,呵呵,我没怎么仔细看,大概是那么个意思。


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这种问题很常见,可能有几个原因:
1.你的质粒构建有问题,可能有突变等什么原因,不知你构建成功后有没有测序验证?
2.你的质粒在你的诱导条件下不表达,部分蛋白不知什么原因不表达或表达量太低,导致很难肉眼观察到。
你可以向某些战友说的用western检测,也可以直接用亲和柱强行纯化,看能不能得到蛋白。
如果能检测到微量表达,你可以尝试不同培养条件,宿主细胞、载体等,增加蛋白的表达。

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1.质粒是别人帮我构建的,经过了测序验证。他也将质粒转进细菌做过预实验,可以清晰的看到目的条带。
2.这个我也觉得有可能,是不是有可能正好和目的蛋白重叠了,导致掩盖了目的条带?我的质粒是加了HIS标签,买了QIAGEN公司的HIS-TAG纯化试剂盒,活性条件下纯化的不好,很郁闷。我现在正在尝试变性条件下纯化,不知道怎么样,今天才跑了PAGE,明天早上去看结果。如果不行,我这周再坐下western。没有其他办法了。
3.非常感谢你。
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有抗体的话做个western把,cbb条带太多,分不清的。

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恩,谢谢,我准备坐,只是二抗还没到,cbb是什么?
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”上清用化学发光法测定有高浓度的目标蛋白“, 是用特异性抗体做的WB吗?

如果上清用western blot做出来了,建议用TCA或者硫酸铵将上清沉淀后,再跑电泳。

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我做是肌钙蛋白T,上清是我用菌体裂解后得到的,沉淀和上清是罗氏化学发光法都能的都很高的肌钙蛋白T。

western还没做,准备这周做下试试。硫酸铵沉淀上清?是直接加在上清里面吗?
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