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标题:【求助】关于检测PKC和PLC磷酸化的western

ukonptp[使用道具]
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【求助】关于检测PKC和PLC磷酸化的western

我做pkc、plc磷酸化的western,做了好几次,什么结果都没有。连背景都干干净净!不知道问题出在哪里,现将我的实验全过程简述如下,请有经验的战友指点一二:

1,  制备蛋白样品:刮刀从平皿上刮下细胞,低温800rpm离心5min,去上清。8×106 cell加入200ul单去污剂裂解液,冰浴裂解20min。加入5×loading buffer,沸水煮10min。常温12000rpm离心10min,取上清电泳。
2,  电泳:每孔上样40ul,120v 30min浓缩,160v100min分离。
3,  转膜:130mA(2.5mA/cm2膜),半干转移150min。丽春红染色,蛋白已经转移上(是否完全转移就不一定,有时将转过的胶染色,还有小部分未转出。)
4,  免疫检测:
封闭:5%脱脂奶,室温2h(或者4度过夜)
一抗:cell signaling的一抗,1:1000和1:200都做过,室温1h、2h、3h或者过夜都做过。TBST洗10min+5min×2
二抗:1:1000和1:200都做过,室温1h、2h都做过。TBST洗10min+5min×2
发光:将膜用滤纸吸干水,用ECL发光反应,曝光。
5,  结果:基本上连背景都没有,胶片上干干净净!

6,查原因:做过ECL和二抗的发光反应,正常。现在还换了一支新的二抗。

疑是一抗的问题,检测PKC磷酸化情况,用的抗体是抗所有PKC磷酸化的其他蛋白的磷酸化位点,所以很多蛋白都该有显示条带,但什么都没有。但一抗是直接从美国买的,cell signaling的产品,在我们实验室-20度冰箱放了大半年,应该不是买了太久没用的缘故吧。看资料抗体可以在此情况下保存很久活性降低不多啊。
做了这么多次都这样,真是绝望。盼高手指点啊。
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66小飞侠[使用道具]
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建议你做个内参,以检测你整个实验过程有无问题
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ukonptp[使用道具]
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怎么做内参照?什么意思?麻烦详答。
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H2O[使用道具]
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是否试过显影定影液?做磷酸化个人认为用PVDF膜比较好,不知道什么原因。
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ukonptp[使用道具]
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显影液定影液没问题。
PVDF膜会好点吗?没试过。
只是觉得我的检测对象是非常广的,就算不刺激,也有很多本底的啊。结果什么都没有。
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H2O[使用道具]
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要不换换抗体试试,全换!
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ukonptp[使用道具]
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我用的是cell signaling的抗体.
有没有国产的抗体,比较好用的,检测PKC和PLC磷酸化情况的。
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bamboo16[使用道具]
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可能在语言的表述上的差别,我还没有搞清除你的一抗和要检测的目的蛋白到底是什么,是检测pkc还是检测被pkc磷酸化的底物蛋白呢?
对于你做western的整个体系我看没有什么问题,一些细节你也没有说,你有没有尝试过用action的抗体在这个体系中有没有条带出现呢?这种抗体国内就有,我想你最好还是尝试一下。
你的裂解液中加了蛋白酶抑制剂了吗?对于这种丝氨酸的磷酸化我没有做过,在文献中有没有磷酸酶的抑制剂呢?
其实二楼说的内参的问题就是检测你的整个体系中有没有问题,尽快尝试一下!
你说的发光发应正常是怎么回事呢?如果发光能持续多长时间呢?在暗室中压片的时候你能看见绿色的荧光出现吗?
还有你用的x光片,是否已经曝光了呢?
说的很罗嗦,希望对你的实验有帮助!
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ukonptp[使用道具]
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谢谢楼上的朋友!

对于PLC,我是检测PLC的磷酸化情况。对于PKC,是检测PKC磷酸化的底物蛋白的磷酸化情况。
有action的抗体,也是去年夏天买的cell signaling 的,还没有试过,我会尽快尝试。
裂解液中加了蛋白酶抑制剂(常用的三种)和去磷酸化抑制剂(氟化纳和叠氮钠)。
关于内参,就是不懂怎么做,是什么意思?检测ACTION,算不算内参?

检测二抗和ECL,我是将二抗直接点在NC膜上,干后,暗室中用ECL检测,有很强绿色荧光。X胶片也无问题,在检测二抗中,胶片上就有二抗发光的点(这个倒是圆圆的,挺漂亮,郁闷)
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ukonptp[使用道具]
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另想请教,检测磷酸化蛋白的western中,膜可否striping后再用,会不会在striping的过程中,去磷酸化了?
如果可以的话,这些膜怎么保存呢,放TBST中浸泡置4度可以吗?可以这样保存多久呢?
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