蛋白质与蛋白组学 » 讨论区 » 经验共享 » 【讨论帖】个人的详细实验过程关于蛋白可溶表达与纯化

采购询价

点击提交代表您同意 《用户服务协议》 《隐私政策》

 
需要登录并加入本群才可以回复和发新贴

标题:【讨论帖】个人的详细实验过程关于蛋白可溶表达与纯化

箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
1
 

【讨论帖】个人的详细实验过程关于蛋白可溶表达与纯化

我是新手,但是做蛋白也2个月了,简单的说,从不懂到稍微懂,走了些弯路,鄙视那些不教人只说风凉话的,对于新人只有先获而后给,不叫不劳而获,不劳而获是连论坛都不上等着别人给你材料。
这次发下我这两个月的成果,给新人参考,也算是还丁香园给我的帮助(可以说,我学的都是论坛上朋友帮助的,现在还给论坛,也算是我自己的归纳了),我想我的文章新人肯定会有用。因为我以前想找类似的文章,可是没找到..
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
2
 
一、证明目的蛋白有表达
1、挑取一单菌落接种于含氨苄(Amp,终浓度为100g/mL)的3mL液体LB培养基中37℃,250rpm培养过夜。
2、将过夜培养菌液以1:100转接于含上述抗生素的100mL液体LB中,37℃,250rpm,3.5h(大量培养至OD600=0.6左右)。
3、取出1 mL菌液为未诱导的电泳对照,剩余培养液加入诱导物IPTG至终浓度为1 mmol/L,继续振荡培养4h。
4、以未诱导菌液与IPTG诱导后菌液作对比,SDS-PAGE检测。
结果如下:图1
1: pET-32aA3未诱导,2: pET-32aA3未诱导,3: pET-32aA3诱导后,4: pET-32aA3诱导后


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:24
95351187.jpg (12.99 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
3
 
二、表达的情况,是可溶还是沉淀
1、将上述的37℃诱导菌液离心(4℃,12000g,5min),弃上清(LB培养液),沉淀重悬于0.9% NaCl溶液洗菌。
2、将重悬于0.9% NaCl的菌体溶液离心(4℃,12000g,5min),弃上清(0.9% NaCl洗菌液),得菌体,称菌体重量,重悬于8mL PBS(pH 7.0)缓冲液,缓冲液用量根据50~100mg/mL的菌液终浓度。
3、超声破菌:冰浴条件下,超声波破碎大肠杆菌,超声设置如下
功率:400W, 工作:15s, 间隔:45s, 全程时间:30min(30次左右)以菌液由白变透明,且不粘稠为依据(少量菌液用液氮反复冻融7次以上效果也不错,而且简单,但是DNA出来后会粘稠,可能加dna酶后会好些,那样好离心,我是用接近最高转速离心的(没加dan酶),不然分不开)
4、将超声波破碎的菌液离心(4℃,12000g,15min),分别收集上清和沉淀,各取1mL,加入1mL 2×上样缓冲液,沸水浴10min,SDS-PAGE检测。
结果如下:图2
1: pET-32aA3诱导上清,2: pET-32aA3诱导沉淀


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:24
49074412.jpg (5.42 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
4
 
三、探索可溶表达条件
有上述实验结果可知,目标蛋白在上清也有表达,即存在可溶性的表达,但是量很少,大部分也包涵体的形式存在(沉淀中),而包涵体的存在也证明了蛋白表达量很高,上清可溶蛋白的可操作性等因素都优于对包涵体蛋白的分离纯化,所以可通过探索可溶表达条件,最终来加大上清蛋白的含量,以利于下一步实验的进行。
影响包涵体形成的因素有很多,如诱导温度,诱导时间,IPTG浓度,摇床转速等等,所以设定在低IPTG浓度下(0.1 mmol/L),在不同温度,诱导时间下的表达对照:

1)37℃ 250rpm 5h
2)30℃ 180rpm 10h
3)23℃ 90rpm 30h
过程:挑取一单菌落接种于含氨苄(Amp,终浓度为100g/mL)的3mL液体LB培养基中37℃,250rpm培养过夜。将过夜培养菌液以1:100转接于含上述抗生素的50mL+50mL+60mL液体LB中,37℃,250rpm,3.5h(大量培养至OD600=0.6左右)。从60mL培养液中取10mL作为未诱导对照,标记3个50mL LB培养菌液:1、37℃ 250rpm 5h 2、30℃ 180rpm 10h 3、23℃ 90rpm 30h
都分5次取样:
37℃ 每一小时取样一次(取10mL)编号为:371、372、373、374、375
30℃ 每二小时取样一次(取10mL)编号为:301、302、303、304、305
37℃ 每五小时取样一次(取10mL)编号为:231、232、233、234、235
诱导培养结束后,将上述样品分别破菌离心,得上清与沉淀,加2×上样缓冲液,沸水浴10min,SDS-PAGE检测。
SDS-PAGE检测:
1、37℃ M 1 2 3 4 5 五个样的上清和沉淀
2、30℃ M 1 2 3 4 5 五个样的上清和沉淀
3、23℃ M 1 2 3 4 5 五个样的上清和沉淀
4、以不同温度下的最优可溶表达做比较
结果如下:
图3图3:37℃条件下五个样的上清和沉淀

1: 371上清,2: 371沉淀,3: 372上清,4: 372沉淀,5: 373上清,6: 373沉淀,
7: 374上清,8: 374沉淀,9: 375上清,10: 375沉淀


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:25
52242951.jpg (9.49 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
5
 
图4图4:30℃条件下五个样的上清和沉淀

1: 301上清,2: 301沉淀,3: 302上清,4: 302沉淀,5: 303上清,6: 303沉淀,
7: 304上清,8: 304沉淀,9: 305上清,10: 305沉淀


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:25
67598606.jpg (9.76 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
6
 
图5图5:23℃条件下五个样的上清和沉淀

1: 231上清,2: 231沉淀,3: 232上清,4: 232沉淀,5: 233上清,6: 233沉淀,
7: 234上清,8: 234沉淀,9: 235上清,10: 235沉淀


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:26
16134842.jpg (9.44 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
7
 
图6图6:不同温度下的最优可溶表达

1: 234上清,2: 234沉淀,3: 303上清,4: 303沉淀,5: 373上清,6: 373沉淀,
由图5可知:23℃条件下,明显的提高了上清目的蛋白的含量,并且,存在可溶表达平衡,即20个小时后,蛋白表达将以包涵体的形式存在,即不论如何改变条件,可溶表达已经达到极限。所以无需探索更低温度等条件。(个人观点,不知道是否正确)


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:26
73874146.jpg (11.72 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
8
 
四、大量制备,表达与纯化
配置1L LB液体培养基,分装成100mL×10瓶,分瓶以利于大肠杆菌生长和后续操作。
诱导培养:挑取一单菌落接种于含氨苄(Amp,终浓度为100g/mL)的3mL×5管 液体LB培养基中37℃,250rpm培养过夜。将过夜培养菌液以1:100转接于含上述抗生素的100mL×10瓶液体LB中,37℃,250rpm,3.5h(大量培养至OD600=0.6左右)。取出1 mL菌液为未诱导的电泳对照,剩余培养液加入诱导物IPTG至终浓度为0.1 mmol/L,23℃,90rpm条件下,继续振荡培养20小时。
破菌收集上清:分别离心(4℃,12000g,5min)加8mL×10管 PBS(pH 7.0)缓冲液重悬后,冰浴条件下超声波破碎(400W,15s,45s,30min),分别离心(4℃,12000g,15min)收集上清(8mL左右×10管)。
稀释过滤上清:将8mL左右×10管菌液用 PBS(pH 7.0)缓冲液稀释为2倍,并过0.45纳米滤膜。取1mL留样。
过镍柱纯化:(8mL左右×10管×2倍=160mL,分2次过柱,每次80mL)
A、用缓冲液I (PBS pH 7.0缓冲液)平衡镍柱,5个床体积,流速为2mL/min。
B、将稀释过滤后的上清上样,流速为1mL/min。
C、用缓冲液I (PBS pH 7.0缓冲液)再洗5个床体积,流速为2mL/min。使目标蛋白充分挂柱。
D、用含50mM咪唑的缓冲液III,洗去杂蛋白,流速为2mL/min。并收集洗杂峰。
E、用含100mM咪唑的缓冲液III,进行洗脱,流速为1mL/min。并收集洗脱峰,收集洗脱液。
F、将收集的洗脱液用15mL超滤离心管分次超滤浓缩,收集各次浓缩液合并后再次超滤浓缩,分装成每管1.5mL,取1mL 4℃备用,其余-80℃保存。
G、各取1mL 过柱前、挂柱穿透、洗杂液、洗脱液加2×上样缓冲液,沸水浴10min,SDS-PAGE检测。
结果如下:图7蛋白质过Ni柱电泳图示

1: pET-32aA3诱导全菌,2: pET-32aA3诱导沉淀,3: pET-32aA3诱导上清,4: Ni柱穿透,
5: 50mM咪唑洗杂蛋白,6: Ni柱洗脱(纯化的蛋白),7: 超滤离心管浓缩的蛋白
全图:


1: pET-32a未诱导,2: pET-32a诱导,3: pET-32aA3未诱导4: pET-32aA3诱导,
5: pET-32aA3诱导沉淀,6: pET-32aA3诱导上清,7: Ni柱纯化的蛋白,8: Ni柱纯化的蛋白


查看积分策略说明
附件
2013-6-1 13:27
53929237.jpg (8.39 KB)
 
顶部
箭头儿[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 74102
精华 2
积分 452
帖子 536
信誉分 104
可用分 3456
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-5
状态 离线
9
 
五、Western Blot
(过程下次补上)

六、多克隆抗体的制备
纯化蛋白加等量的弗氏完全佐剂进行乳化使之形成油包水乳剂(我用枪吹了2个多小时),采用皮下、皮内和肌肉注射的方法进行第一次家兔免疫。再次免疫使用弗氏不完全佐剂乳化,最后一次静脉加强免疫时则不用佐剂。每次免疫抗原量为400 -500g/次(1mL左右),最后一次加强免疫7-10 d后采血。将所采血4℃凝结过夜,取血清(3000rpm 10~15min),加入NaN3后于4℃保存(我是直接-80保存,什么都没加)。用琼脂双扩散的方法测定抗血清效价(还没做)
七、什么什么效价(还没做)
用琼脂双扩散的方法测定抗血清效价
顶部
pencil菲[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 75646
精华 1
积分 410
帖子 476
信誉分 102
可用分 3191
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-10-26
状态 离线
10
 
WB我做了一次就成功了,步骤没电子版的,现在实验在多抗制备阶段,琼脂双扩散的方法测定抗血清效价还没研究,希望大家的帮助
感谢楼主等各位高手的帮助。。希望新手少走弯路
顶部