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标题:【求助】镍柱纯化蛋白有杂带,做了梯度没有改善

KGZ564[使用道具]
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【求助】镍柱纯化蛋白有杂带,做了梯度没有改善

左一为Marker,左二为全菌裂解液,左三为细菌裂解液过镍柱后的流穿液,右边三个为第一二三毫升的洗脱液。纯化的上面一条是目的蛋白,下面为杂蛋白,流穿液里面含有大量的目的蛋白。做了binding buffer和elution buffer梯度浓度了,结果没有改善。 我采用的是康为世纪的Ni-Agarose His标签蛋白纯化试剂盒,请帮忙分析原因,以及接下来如何优化?谢谢!!!!!


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vivian4123[使用道具]
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采用载体为pET43.1a(+),表达菌为Rosetta.表达蛋白是可溶蛋白。接下来需要打兔子做抗体,请问如何优化?小女子新人一个,求解释!
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综合看来你的目的蛋白挂柱能力不强,可以在你得目的序列里再加一些his标签、、我的蛋白纯化后也是有杂带,别人教我说把wash buffer 的浓度提高一些,我还没试过,你可以做一下
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综合看来你的目的蛋白挂柱能力不强,可以在你得目的序列里再加一些his标签、、我的蛋白纯化后也是有杂带,别人教我说把wash buffer 的浓度提高一些,我还没试过,你可以做一下

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梯度我都做过了,没有明显改善。估计是杂蛋白和镍柱结合能力强过我的目的蛋白吧。现在打算再切胶纯化。我在纠结用考马斯染色还是KCl染色。。。。有没有人指导一下?
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IAM007[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 KGZ564 于 2013-6-3 17:28 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
综合看来你的目的蛋白挂柱能力不强,可以在你得目的序列里再加一些his标签、、我的蛋白纯化后也是有杂带,别人教我说把wash buffer 的浓度提高一些,我还没试过,你可以做一下

=========================================== ...

我们没做过切胶纯化,跑胶的时候不都加了变性剂了么??用非变性胶跑,我们组两种染色都做过,kcl染色后的带看着不是很清楚
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切胶回收吧,省钱省事量大 ,KCL染色
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你买的试剂盒里的成分是什么,有盐和表面活性剂吗
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QUOTE:
原帖由 am10 于 2013-6-3 17:28 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

切胶回收吧,省钱省事量大 ,KCL染色

我也打算切胶回收,不过,就是要切太多胶了,因为一次性要免疫20只鸡,免疫一次要切胶30块了吧,工作量很大,实验室又没有大胶。请问KCL染色切胶的方案能不能发给我呀?
我同时也打算做个分子筛,不知道有没有意义。
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jiushikeshui371[使用道具]
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你的蛋白表达量不低,不需要做切胶纯化吧。

我看了看康为世纪的试剂盒,Binding Buffer的咪唑浓度是10mM,你可以把咪唑完全去掉,然后增加细胞裂解液和层析填料结合的时间,或者干脆让层析填料放到细胞裂解液中去,室温在脱色摇床或者别的上面震荡结合,以提高结合能力。

然后你洗脱的时间梯度选的可能不是很合适,首先你要用较多的5~10CV的Binding Buffer来洗去未结合蛋白,然后逐渐增加梯度洗去杂蛋白,左4道 洗下来的是杂蛋白,可以用这个浓度多洗,或者再优化一下梯度。最后用较高的咪唑浓度洗脱目的蛋白。

好不容易做了构建,表达了可溶性蛋白还切胶纯化是不是有点浪费?
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KGZ564[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 jiushikeshui371 于 2013-6-3 17:30 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
你的蛋白表达量不低,不需要做切胶纯化吧。

我看了看康为世纪的试剂盒,Binding Buffer的咪唑浓度是10mM,你可以把咪唑完全去掉,然后增加细胞裂解液和层析填料结合的时间,或者干脆让层析填料放到细胞裂解液中去,室温在脱色 ...

主要是杂志的结合能力太强了。做了所有浓度的梯度优化,都没有改善。切胶很痛苦,要切好多,我也不想的。构建的时候,只在中间有一个组氨酸标签。这是之前前辈的构建方式,我只是修改了片段拿来用而已。没想到这个影响挺大的。我真不知道之前的人之怎么过柱纯化出来的。
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