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标题:【求助】纯化蛋白遇到了很多问题,郁闷死了

she[使用道具]
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【求助】纯化蛋白遇到了很多问题,郁闷死了


最近看了论坛里有很多纯化方面的大师,小弟目前也遇到了些纯化方面的问题,希望大师们给小弟点意见

我用的蛋白纯化系统是halotag蛋白纯化系统,这套系统好像用的人不多,原理是这样的:目的蛋白和halotag标签形成融合蛋白,标签会和resin形成共价结合,结合在resin上的蛋白需要用TEV酶切才能把目的蛋白切下来。
我现在遇到的问题是切下的目的片段大小是正确的,就是做western怎么都检测不出来。我把实验从头说起,请大家耐心的看下

蛋白的表达。我是按照操作手册做的,表达后有条43KD的片段明显增多,应该是表达出来了,我把细胞裂解液做了western,证明有我的蛋白。并且用tev蛋白酶切细胞裂解液,也证明切出了halotag标签。但是用resin上柱后,发现大部分蛋白仍在流穿夜中。由于蛋白和resin 共价结合,没办法通过跑胶检测蛋白是否挂到resin上了,我用TEV酶切柱子,洗脱下了一个很淡的约8kd的片段,有些弥散,我的目的蛋白大小也是8kd。但是这个片段用western怎么都检测不出来,也打了质谱,发现没有我的片段

后面我又重新做了克隆,在C端连了his。用his纯化方法。但是发现his上柱后,大部分蛋白仍在流穿夜中,但是跑his柱发现上面还是结合了不少43kd左右的蛋白,比较浓。然后用TEV酶切,也切出了曾经看到的那条8kd的片段,用western仍未检测出来。现在可郁闷了。

大家先看看,我一下子说多了大家会看腻烦的,我后面会慢慢补充,
小弟在这里先谢谢大家乐

补充:我用的是KRX感受态,鼠李糖诱导表达。
通过比较总的细胞裂解液和离心后的细胞裂解液,发现没有形成包涵体
融合蛋白的PI值是5.0 缓冲液PH是7.5
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ffooll[使用道具]
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大概帮你分析了一下。
首先,蛋白的表达量可能非常大,可能超过了柱子的载量。通过后面你说的his tag纯化时可以看出,大部分蛋白穿过了,依然能有很多结合在镍柱上。你可以尝试增加镍柱体积,然后延长孵育时间,让蛋白和柱子多结合一段时间(就像纯化GST蛋白一样,多孵育一会),看是否有提高。根据经验,一般可以改善不少。
其次,你的蛋白有可能结合核酸之类的东西,阻碍了它与柱子结合。我之前做过这类蛋白,结合核酸非常厉害,破碎前要加入核酸酶,然后过镍柱时还要孵育很久,后面还要过离子柱去核酸。或者用一种聚合物叫PEI,具体加多少哦,需要摸索。如果实验室有钱,可以买磷酸纤维柱去除核酸。
第三,关于TEV酶切这一步。你后来纯化出的带his tag的,酶切完了用质谱能检测到蛋白吗?只看到你说western做不出。如果质谱可以检测到,那就是western这一步出问题了。至于western的问题,版上有很多讨论帖。
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she[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 ffooll 于 2013-6-4 10:46 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
大概帮你分析了一下。
首先,蛋白的表达量可能非常大,可能超过了柱子的载量。通过后面你说的his tag纯化时可以看出,大部分蛋白穿过了,依然能有很多结合在镍柱上。你可以尝试增加镍柱体积,然后延长孵育时间,让蛋白和柱子多结 ...

谢谢你的答复
我重新加大柱子量了,也延长了上柱时间,但是没有一点起效,柱子的结合效率还是那么多,流穿夜中还是有那么多目的蛋白

用目的蛋白的抗体和his抗体都检测了柱子上的蛋白,证明是我的目的蛋白。但是经过TEV酶切之后,在8KD的位置依然有一条很明显略有弥散的带,做了两次western都没做出来,以前用另一种方式纯化(不是his纯化)的打过质谱,没有我的目的蛋白。现在有点担心,不知道能不能打出来
我有点疑问,我酶切后蛋白酶没有去处,和目的蛋白放在一起会把目的蛋白降解吗?

还有,你说核酸会影响上柱,那我如何能证明呢,我必须先证明是核酸引起的才能取申请买材料
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8princess8[使用道具]
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按理来讲,你已经得到自己要的蛋白了,只是WB没有检测出来。
8KD的蛋白做WB不知道你是怎么做的,这个也是蛮讲究的,包括转膜的孔径大小,转膜的时间都需要控制好。比如一个80kd的蛋白WB与一个16KD的蛋白做WB,这方面的参数是完全不一样的,以前我曾因为这个问题废了不少事情,不知道这位哥们做WB注意到这些细节没有。
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she[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 8princess8 于 2013-6-4 10:48 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

按理来讲,你已经得到自己要的蛋白了,只是WB没有检测出来。
8KD的蛋白做WB不知道你是怎么做的,这个也是蛮讲究的,包括转膜的孔径大小,转膜的时间都需要控制好。比如一个80kd的蛋白WB与一个16KD的蛋白做WB,这方面的参数是完 ...

之前我用一个6kd的蛋白做阳性对照,western做出来了,所以我一直没有怀疑过我的western,而且之前用halotag纯化系统纯化蛋白,也切出了8KD片段,但是打质谱却没有我的蛋白。
这次用his纯化,考染现象都一样,western仍做不出来,准备打质谱,但心里没有底

我做western用的是0.22um孔径的pvdf膜,350的电流,75分钟,我确定用立春红染不出这条8kd片段,但能然出阳性对照6kd片段,而且我的目的蛋白浓度很高

不知道哪里还需要改进,请大侠提点意见
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kuaizige[使用道具]
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Halo Tag我用过,或许可以解答一下。
1:蛋白与填料结合的检测:你可以将结合了Halo融合蛋白的填料取10ul,加入SDS PAGE Loading buffer,煮10min,点样。这样你的蛋白可以被煮下来。
2:蛋白与填料结合的效率:这个问题你应该看看填料的说明书,按照里面推荐的结合buffer来操作,因为是共价结合的,因此buffer会有影响。你可以先试一下优化。而且,蛋白穿透出来很正常,因为不排除有折叠不正确的会挂不上柱。
3:8kd的蛋白western测不到:你之前用细胞裂解液做的western是用什么抗体做的?抗Halo吗?还是抗你这个蛋白?8kd的东西可能转膜什么的会有点难度,你可以试一下用酶切之前的蛋白做一次Western,看看能不能测出你这个8kd的东西。
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原帖由 kuaizige 于 2013-6-4 10:48 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

Halo Tag我用过,或许可以解答一下。
1:蛋白与填料结合的检测:你可以将结合了Halo融合蛋白的填料取10ul,加入SDS PAGE Loading buffer,煮10min,点样。这样你的蛋白可以被煮下来。
2:蛋白与填料结合的效率:这个问题你应该看看 ...

谢谢您的帮助。halotag标签和柱子是共价结合的,无法通过煮样让蛋白与柱子分离,所以你说的那个方法跑胶里面是空的。
也就无法观察柱子上是否有蛋白
您是怎么做的?
我蛋白是融合蛋白,用了两种抗体都抗过,都没抗出来
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windy+++[使用道具]
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楼主的第二次纯化时设计了 C-terminal His tag,所以可以尝试一下酶切前后的样品同时用His antibody(酶切后仍然带His tag吧) 及 target Protein antibody 做 Western blot,
先确认一下能否检测得到吧。
或许8kDa的那个带就不是目的带。
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原帖由 she 于 2013-6-4 10:50 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')


谢谢您的帮助。halotag标签和柱子是共价结合的,无法通过煮样让蛋白与柱子分离,所以你说的那个方法跑胶里面是空的。
也就无法观察柱子上是否有蛋白
您是怎么做的?
我蛋白是融合蛋白,用了两种抗体都抗过,都没抗出来 ...


煮是可以煮下来的,因为SDS破坏了halo的高级结构,这个我试过。如果你煮出来是没东西的话,可能就是没挂上了。融合蛋白用两种抗体都抗不出来,你有没有做过阳性对照?抗体没问题吧?抗his的有没有做过?还有序列正确否?
如果western还是做不出来,还有一个方法,直接用你的融合蛋白和你的抗体做结合反应,然后跑非还原非变性较,看看条带有没有迁移,这样可以判断蛋白和抗体有没有结合
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she[使用道具]
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煮是可以煮下来的,因为SDS破坏了halo的高级结构,这个我试过。如果你煮出来是没东西的话,可能就是没挂上了。融合蛋白用两种抗体都抗不出来,你有没有做过阳性对照?抗体没问题吧?抗his的有没有做过?还有序列正确否?
如果western还是做不出来,还有一个方法,直接用你的融合蛋白和你的抗体做结合反应,然后跑非还原非变性较,看看条带有没有迁移,这样可以判断蛋白和抗体有没有结合

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不好做哦,我的洗脱液里洗脱下来的蛋白里有TEV蛋白酶,这个酶很奇怪,和我的蛋白抗体结合啊,而且带非常亮。这个会干扰的
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