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标题:【求助】western背景高

zhihui小新[使用道具]
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【求助】western背景高

各位战友,

最近作western,背景非常高,改变了几个条件,还是不行。
请大家会诊一下。
另外,大家是否碰到过这样的问题?都是如何处理的?
我注意到本版关于背景深的问题有不少战友提出过疑问,希望有经验的战友能够献计献策,指出对可能的原因,提供自己试验中消除背景的具体方法。帮助大家共同进步。


[ 本帖最后由 zhihui小新 于 2013-6-4 11:50 编辑 ]


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2013-6-4 11:50
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zhihui小新[使用道具]
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上样蛋白量30 60 100 ug,4度封闭过夜(包括室温下2h+过夜),一抗室温1h,二抗室温1h, ECL显色结果背景都很深,整个膜都很亮。而目的条带都相对很浅,曝光时间从几s到1min,目的条带都很细。
开始考虑是封闭不好的原因,过夜封闭+室温2h还不行。
考虑上样量太高了,做了一次预试,发现上样量10ug,看不到目的条带;20ug稍微有点影子;感觉30ug还可以,不能再少了。
考虑缩短抗体孵育时间和浓度。一抗用的是1:1000(santa cruze抗体稀释范围的最大值);二抗用的是1:10 000。
洗脱时间10min*3次,感觉洗的应该非常干净了。

下一步,我想继续稀释一抗和二抗,上样量保持30ug。
请教有经验战友,有什么建议?
谢谢
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wood533[使用道具]
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你的ECL工作液孵育完后有没有用吸水纸吸取多余的工作液?你的整个膜都很亮,怀疑是否发光底物液残留太多。
个人觉得你的封闭应该可以(我都用室温2小时),一抗可以试着降低浓度(但你的背景那么高,觉得跟一抗关系不大),二抗1:10000也可以了。漂洗液加Tween了吗?封闭液、稀释液都用含Tween的漂洗液配,有助于降低背景。
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zhihui小新[使用道具]
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如果洗干净了,ECL工作液是不会发光的。我的工作液不发光。
封闭液和稀释液都含有Tween。
今天又做了一次,明天发光,出了结果再向大家汇报。
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wood533[使用道具]
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当然不能洗掉ECL工作液啊,只是用吸水纸把多余的吸去。另外,加完HRP-二抗后还是尽量多漂洗,我一般洗4-5次。不过没遇到过你这样高的背景的情况。希望你能找到不一样的原因。
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图文并茂,个人觉得可以是一个值得探讨的问题!所以先给tony1982加了一分。
希望大家能积极参与讨论。

ECL工作液可以用定性滤纸或者吸水力比较强的纸巾完全吸干。
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zhihui小新[使用道具]
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7
 
ECL工作液体之所以发光,是因为二抗孵育后,没有洗干净,还有未结合的二抗与工作液反应显色。但是,如果洗的足够充分的话,工作液在暗室中是看不到的(没有颜色)。
我试过,当5min*3次洗脱时,ECL残留的工作液确实有荧光;但是,当我洗脱10min*3次时候,在暗室中ECL工作液就看不到光了。
请战友们继续讨论
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fsdd817[使用道具]
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8
 

肉眼与胶片。。。

不科学的问一下, 是否有数据可以说明他们之间感光程度的差异。。。。google一下 呵呵
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niangao1980[使用道具]
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9
 
你用的ECL底物是那个公司的?是GE还是Pierce?
个人认为你可以以30ug作为上样量,但是可继续提高一抗稀释比例(特别是如果你采用的是GE的ECL底物)1:3000,一抗牛奶4度过夜,二抗室温1h,依你的膜大小,考虑加ECL底物300ul-500ul

个人主要认为还是一抗稀释比过低
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我们这里这段时间也出现了这种情况,我们用的一抗是杂交瘤上清,曝光出来也是背景很高,其它的和楼上说的基本相似。也很想搞清楚是什么回事。
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