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标题:[未解决]请教:waters WCX小柱洗脱步骤有什么经验吗?

  [未解决]本主题悬赏 可用分 10  
ccf335[使用道具]
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请教:waters WCX小柱洗脱步骤有什么经验吗?

请教:有哪位大侠用过waters WCX的固相小柱?在活化、淋洗还有洗脱的步骤中有什么经验吗?比如速度,PH什么的。。。谢谢!!!
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zhufangwei[使用道具]
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有操作说明的,直接按照说明书上操作是完全没有问题的
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  • miracle   2009-12-24 21:08  可用分  +3   谢谢您的热心应助!欢迎您常来! ...
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ross_racheal[使用道具]
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对于这款适于强碱性化合物分离的小柱没有用过,但我用过MCX和HLB的。在分离中,最主要的还是洗脱速度,对于淋洗时,保证外界压力在10一下。而在洗脱的过程中,就让它慢慢流下来,最后再施加外力将其彻底洗出。
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ccf335[使用道具]
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那么请教LS,用MCX小柱的时候,活化的PH是多少?还是直接就是甲醇和水活化的?我之前用的就是MCX的小柱,但是提取回收率较低,不到50%的样子,waters的工程师来了之后建议我换用WCX,结果试用之后发现上样就挂不住,郁闷啊!
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ross_racheal[使用道具]
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你的化合物的酸碱性是什么?你处理样品的程序是什么 样子的?你发上来,这样我会根据你的做法分析。
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ccf335[使用道具]
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做的是TTX,PKa8.6,我的基质是血样,目前先是用的标准品做的。处理过程是0.5ml血样+1.5ml1%乙酸甲醇溶液混旋,离心,取上清液冻融之后再次离心,取上清液过固相小柱。固相萃取的过程是:先甲醇、水活化,然后上样,再分别经过乙腈、甲醇、水淋洗之后,用0.2M HCL/20%MeOH(ph1)洗脱,用量都是1ml。

请指教,谢谢。
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ross_racheal[使用道具]
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建议:首先没必要使用先沉淀蛋白后SPE的方法,固相萃取能够很好的去除内源性物质的干扰。你参考一下这款小柱的说明书,将样品制备再重新优化一下。
其次是在淋洗的时候,不要使用纯乙腈和甲醇,使用含有一定比例水相的甲醇溶液,我想你的回收率低,可能这部损失比较大。
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  • miracle   2009-12-25 17:52  可用分  +3   感谢您提供详细帮助!
  • miracle   2009-12-25 17:52  专家分  +2   感谢您提供详细帮助!
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michael_b_rex[使用道具]
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同意,血样可以经有机溶剂沉淀下蛋白。过SPE小柱时,淋洗时要摸索下淋洗液中有机相和水相的比例,给能保证去除杂质,又能获得较高的回收率。这一步要摸索。
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eedc-dcnge[使用道具]
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waters WCX 一般是用1mL甲醇和1mL水活化和平衡,然后上样,然后用1mL水
和1mL甲醇清洗小柱,最后用洗脱液洗脱目标组分。
萃取速度一般不超过1mL/min.
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ccf335[使用道具]
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谢谢大家一再耐心的指教
关于上样的基质,以前我也用血样直接稀释了就上样的,但是最后的洗脱液比较脏,明显有颜色,液质做了之后很容易脏,在离子源外面的盖子上明显的黑了,另外就是喷雾针会弄堵。
在整个过程中,从上样开始,我都收集了各步骤的液体,吹干之后同样用LC液定容,然后液质分析。从分析的结果来看各个步骤均没有目标物质,这样能不能说明中间步骤是没有损失的?
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