小中大各位大侠99偶吧!
本人暑假在四十几度高温条件下做WB.组织蛋白上样每孔200ug,大约20ul/孔,电泳80V跑出浓缩胶,100V分离胶至底部,切胶约3*7CM2,伯乐半干转膜仪(250V/3.0A/300W),目的蛋白38KD,30MA恒流转160分钟,用的PVDF膜是师兄留下来的,也不知道是哪个公司产的,DAB显色,效果还不错.
现在分别用了millipore和北京中杉的PVDF膜,孔径是0.45um,同样的条件做不出来了,每次转膜后都发现膜很花,怀疑是有短路电压过高所致(超过了25V),封闭以及一抗二抗杂交后膜不花了,但是DAB显色又全花了,目的蛋白出不来.现提出几点疑问,望好心人帮忙解答:
1,恒流转膜和恒压转哪个效果好些,我们实验室的仪器不能超过25V,有没有用伯乐半干转膜仪做过WB的大虾,40KD左右蛋白转膜条件求助!
2,膜花的原因是什么?并且感觉膜比以前用的要薄,会不会30MA恒流转160分钟将目的蛋白转过了?
3,偶还要做培养细胞的蛋白,每孔上样40ug够了吗?
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说说我们的做法
1,就个人意见我觉得恒压转膜的效果更好一点,我们用的方法是100V恒压转膜3小时,但全程注意降温,因为会产生很多热量。
2,蛋白一般是不会转过的,膜先用甲醇泡10s左右,注意洗膜和封闭,牛奶要好,我们用的是光明的脱脂奶
3,细胞裂解液每孔上40ug足够了!
祝你好运!