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标题:【求助】关于考马斯亮蓝染色问题

niangao1980[使用道具]
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【求助】关于考马斯亮蓝染色问题

我刚刚入手蛋白质表达实验阶段,做了几次SDS-PAGE
发现染色效果不好,染色模糊,而且越是低分子量的蛋白质越是着色模糊,蛋白条带也很少。
我的染色液配制时间不长,我配制的成分是 :水 异丙醇 冰乙酸 考马斯亮蓝
脱色液是 :水,冰乙酸 乙醇
我问老师染色液中异丙醇与脱色液中乙醇不一致,是否影响染色效果,老师说不影响。
所以我现在想请教为什么我的染色效果不好?
还有一个问题就是电泳完毕直接染色,还是先浸泡在固定液一会再染色
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yychen[使用道具]
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2
 

是不是与染色液和脱色液的配制有关呢?

一般用的染色液: 蒸馏水 甲醇 冰乙酸 考马斯亮蓝R-250;脱色液:蒸馏水,冰乙酸 甲醇

电泳完毕后直接用蒸馏水漂洗凝胶两次即可进行染色。
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standbyme[使用道具]
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电泳完毕后直接用染色液染色即可!另外,染色液和脱色液可以相同,只是染色液中有染色剂。低分子量的蛋白质越是着色模糊可能是蛋白质从胶的空隙中逃了,适当加大胶的交联度,快速染色(微波加热)可能回奏效。如果是低分子量的蛋白比较多,用尿素胶体系一试!
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changlhsyo[使用道具]
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还有一个问题就是电泳完毕直接染色,还是先浸泡在固定液一会再染色

我用的染色方法有两种:
第一种是电泳完毕后,直接染色,但染色的时间长一般需要过夜染色,然后先用高浓度脱色液脱色,再用低浓度脱色液脱色;
这用方法的缺点是时间太长了。
第二种方法是电泳完毕后,先固定30分钟,然后高温进行染色30分钟,在高温进行脱色,一般很快就会出现结果,但这种方法的蛋白胶不太容易制成干胶。
两种方法染色效果都挺好的!!!
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jkobn[使用道具]
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请问什高浓度脱色液和低浓度脱色液区别是什么
我觉得是不是我电泳的电压太高,产热高,导致染色效果也不好
我电泳的电压是350~420V,电流是30mA~40mA,我开始认为是我的缓冲液配置有误,重新配制仍然是这样,而且因为是双面跑胶,总是一面跑的快,一面跑的慢,是因为两面的浓缩胶和分离胶不一样长,还是电泳槽的问题呢?电压太大会不会影响我的染色效果呢?
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niangao1980[使用道具]
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呵呵,高浓度稀释不就成了低浓度吗?低浓度为了偷懒脱色过夜用的。
象我这种懒人。我是一跑完胶就用自来水洗一下,然后考染5分钟,然后就是脱色拉。
跑分离胶电压为100v,浓缩胶为200。
你所说的“发现染色效果不好,染色模糊,而且越是低分子量的蛋白质越是着色模糊,蛋白条带也很少”
我估计是电泳缓冲液的问题。你用一下新的看看
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我觉得有可能是染色的时间短,一般要0.5-1小时的,染色时间短,自然带少,至于模糊要注意胶浓度问题,小分之的热扩散厉害,所以不要电泳时间太长,胶浓度别太低,电泳的电流稍微小点,小分子模糊是很正常,只要不很厉害没有关系。
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niangao1980[使用道具]
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我每次都是染色过夜的,应该染的透彻,因为总是一板胶跑的快,一半胶跑的慢,跑的快的染色效果 较好一些,跑的慢的小分子量的蛋白就什么也看不到。
我配制的是15%浓度,我觉得不是胶浓度的问题,应该是电泳的问题。
因为电流小,当然跑电泳时间长,电流30mA,电压都380V了。
我觉得好象也不是电泳液配制的问题,因为电泳液我配制了好几次,都是这样,而且如果是电泳液的问题,应该不会影响两板胶跑的速度问题。
这样排除各种因素,是不是电泳装置的问题呢?
各位大虾不知同不同意我的分析。
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kulee[使用道具]
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请问什高浓度脱色液和低浓度脱色液区别是什么
我觉得是不是我电泳的电压太高,产热高,导致染色效果也不好
我电泳的电压是350~420V,电流是30mA~40mA,我开始认为是我的缓冲液配置有误,重新配制仍然是这样,而且因为是双面跑胶,总是一面跑的快,一面跑的慢,是因为两面的浓缩胶和分离胶不一样长,还是电泳槽的问题呢?电压太大会不会影响我的染色效果呢?

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困惑中,您跑的是mini胶还是大胶,mini胶的电压能跑到这么高吗?发热量太大的话肯定蛋白质容易扩散.您用的电泳条件是恒压还是恒流亦或恒功率?难道您两面的浓缩胶和分离胶不一样长吗?如果不一样长那么肯定两面跑的速度不一样,分离胶和浓缩胶PH值和胶浓度都不一样,跑的快慢当然也不一样啦.
感觉问题还真不一定是染色的问题
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niangao1980[使用道具]
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是的,我跑的胶是mini胶,电泳的条件是恒流,我两面的浓缩胶和分离胶确实是不一样长,您说的对,如果胶不一样长,会影响电泳的速度,我再调一下实验条件,使胶的长度大致一致,如果还是跑的不一样,那也许就是电泳装置本身的问题了。谢谢楼上大虾的回复!
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