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标题:【分享帖】一种简单的亲和纯化方法

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【分享帖】一种简单的亲和纯化方法


在普通的分离中一般都用层析柱分离,但是需要柱子和设备,这就限制了亲和介质的应用,这里介绍一种方法可以不需要层析设备就可以做分离纯化:
依据重组蛋白的表达量算出要用的金属螯合琼脂糖凝胶的量,金属螯合琼脂糖凝胶的载量为10mg/ml左右,样品先过滤,然后把一定量的介质直接投到样品中,在摇床上震荡5-12小时,保证要让介质悬浮起来,这样吸附更充分,而后抽滤,再用5倍介质体积的缓冲液含0.5M的NaCl在抽滤器上分三清洗,随后用3倍缓冲液含50mM咪唑分两次清洗,最后用3倍缓冲液含50mM咪唑分两次清洗,把收集的清洗部分跑电泳鉴定,这样不需要柱子也就可以分离带his标签的重组蛋白,快捷而且方便,没有柱子的情况下不妨一试,这个方法也适用于别的层析介质,只是洗脱方法不同而已。
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是版主 自己用过的吗?看起来很不错。以前做过免疫亲和层析就是先用抗体与胶粒放一起摇一阵,摇后装柱。想来应该是一个道理。
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是呀,我最近很喜欢这样的方法,包括去内毒素我都是这么做的,我觉得非常好,而且对于某些作用力弱的蛋白,作用时间短还挂不上呢,这样晚上也可以做试验又不耽误时间而且可以同时做好几份呢,其实最好玩的是只要你测定上清和你原来样品的对比,你就知道有没有吸附,吸附了多少,一目了然,很好玩的,总比跑柱子快点。
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是的,但我觉得这种办法可能仅限于亲和柱吧,因为亲和反应发生得慢,用柱子流速慢就不合适,如果把这方法用来跑疏水柱和离子柱就不行了。版主 的看法呢?
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一样的,离子交换在工业上也有这么做的,疏水也没有问题,关键是样品要调好pH和电导,介质也这样就行,我现在也经常用阶段洗脱,这样洗脱后做电泳很容易摸最佳的条件,所以没有问题的,其实分子生物学的那些试剂盒就是用这样的方法,例如现在提取DNA质粒的试剂盒用的就是DEAE的功能基团,洗脱也是阶段的,前些日子做质粒制备的时候仔细读了试剂盒的说明书发现的。
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是这样啊,谢谢了。原来是因为实验室里制备量小,所以这些高招没有用过,呵呵。。。
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何必客气,我也是从做内毒素去除的时候老这么做所以才喜欢的,以前也没有这样做,其实这样做就是浓度有时候稀而且不一定很纯,如果条件把握好了,洗得很充分,那应该是不错的方法,对摸条件其实很有用处,特别是仪器不够用的时候。
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那Qiagen 用来去除内毒素的magprep 制备大量高纯质粒也是用你提到的提DNA用的介质了?

内毒素也是蛋白,如何才能被从溶液中除去呢,是因为它们分子小吗?(我指从蛋白混合物中除去)
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我对试剂盒不很熟悉,但是通常的少量去除内毒素和DNA分离是可以通过离子交换树脂分离的,但是大规模是很难的,我们试过,所以最后我们是用专门去内毒素的亲和介质去内毒素的,而内毒素主要是磷脂多糖,很复杂,它们很容易形成聚合物,所以分子量范围分部很广,因此最好的去内毒素还是用亲和吸附好点,载量大,操作简单,而且收率高,Qiagen 的magprep有很多种,我不清楚,你可以发份材料看看就知道它用的是什么原理,我主要是做下游的所以对分子生物学和试剂盒不熟悉,但是介质合成和分离原理应该熟悉点,我只对pierce 去内毒素用的是亲和,而且Qiagen 用内毒素裂解液,估计是多粘菌素吧。
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Qiagen 用来去除内毒素的magprep 说可以做多大的质粒量,超螺旋比例到多少呢,很想了解一下
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