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标题:【求助】蛋白质透析除咪唑大量沉淀

quiqui008[使用道具]
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【求助】蛋白质透析除咪唑大量沉淀

目前我在表达一个26k左右的蛋白,pET32a载体,可溶性表达,带有Trx标签,500mM咪唑,20mM磷酸盐,PH 7.4洗脱,因为要做EK酶切,打算把体系置换为磷酸盐缓冲体系,然后过SP去除标签,可透析后出现大量沉淀,纯化下来的蛋白质浓度大概在2mg左右,但为了保证EK酶切的效率,就没有稀释。请问这种情况该如何处理?EK酶切在有咪唑存在的情况下是否可行?另外EK酶切的温度一般在多少为好?我用的推荐使用22度16小时,但对我的蛋白效果一般,请问37度对蛋白影响怎么样?

有点长,谢谢耐心看完,寻求帮助!
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mamamiya[使用道具]
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1、酶切条件:20mM Tris pH8.0,35-37度,16小时,做酶切梯度,找出最佳酶量。

2、咪唑对EK活性有影响,应该去除。透析沉淀情况不明,可能和pH有关,可以考虑提高pH。

3、酶切是融合蛋白不用做稀释,我用20-30mg/ml的浓度也一样切。

4、市场上的EK有两种,一种是E.Coli.表达,活性低;一种是酵母表达,活性高。

5、37度对蛋白有没有影响是无法事先判读的,做一次看看不就可以了吗。

6、除酶切后的标签蛋白,可以考虑再用一次Ni柱。
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quiqui008[使用道具]
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解答太详细了,多谢!透析我尝试了几个PH值,9.0,8.0,7.4,都不行,蛋白理论等电点是8.8,应该用多大PH。
另外盐浓度对EK酶切有影响没?谢谢!
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mamamiya[使用道具]
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可溶上清表达,Ni柱纯化后透析去除咪唑产生大量沉淀,这在我的经验中从来没有遇到过。能否把整个试验流程的缓冲体系讲一讲,看看怎么回事。
盐浓度都酶切有影响,高浓度盐抑制EK活性。
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quiqui008[使用道具]
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载体,pET32a,1mM IPTG诱导,超声破菌后离心保留上清(电泳验证目的蛋白在此)。上样buffer:20mM NaH2PO4,0.5M NaCl,平衡镍柱,20mM NaH2PO4,0.5M NaCl,20mM 咪唑洗脱杂蛋白,20mM NaH2PO4,0.5M NaCl,500mM 咪唑洗脱目的蛋白,也尝试过不加NaCl的。
透析液:1、50mM tris, PH 8.0,9.0,7.4
2、20mM NaH2PO4 PH 8.0,9.0,7.4
都出现沉淀。蛋白等电点大概在8.8左右,还有要提的一点是,洗脱蛋白-20度冷冻保存复溶后也产生沉淀。洗脱蛋白浓度大概在2-3mg/ml,尝试过稀释到1mg/ml左右,也有沉淀。

请帮我分析一下。另外我看园子里有用“万金油”进行蛋白透析复性的,不知道用在我这上面是否可以啊?
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quiqui008[使用道具]
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刚刚再次拜读了您之前发的帖子,发现我目前这个蛋白和你所纯化的蛋白A比较类似,我是否可以用类似的方法呢?另外就是我不知道我这个蛋白的可溶性怎么样,如果镍柱纯化下来以后脱盐置换缓冲体系,是否会沉淀在柱子上呢?
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mamamiya[使用道具]
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1、超声破菌buffer同上样buffer?pH?

2、20mM NaH2PO4,0.5M NaCl,500mM 咪唑 这个溶液检测过pH没有?

如果回答都是yes的话,我也不知道沉淀的原因。

万金油中含有EDTA,对EK有抑制。

如果透析有沉淀,那么G25换液也很有可能沉淀。
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quiqui008[使用道具]
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回答都是yes,PH值都是7.4,是不是就是我这个蛋白本身的溶解度的问题啊?或者说浓度太高了的原因?今天我配了点万金油,还是有沉淀,不过感觉是少了一点,明早再看看,测一下浓度再说。还有一个问题就是,我把万金油是放在透析袋的里面,最后的体系是不是就和我设置的体系一样了啊,里面的成分都可以透析掉吧?
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daod[使用道具]
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蛋白在等电点的溶解度是最低的,你的是8.8,不适合用9和8吧,大概再低一些,另外你的蛋白本身是可溶还是膜蛋白,离子强度由500mM突然降到0,会对结构有很大影响的
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lixi559[使用道具]
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你纯化的buffer中都有0.5M NaCl,但透析溶液里就只有20mM NaH2PO4?可能是离子强度不够蛋白沉淀了。试一下透析buffer中加入0.1%Triton X-100或者甘油,并且提高NaCl浓度。或者你可以在Ni柱上切啊,这样连咪唑洗脱都不用了。
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