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标题:【求助】Western blot:细胞色素C检测不出来?

zhihui小新[使用道具]
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【求助】Western blot:细胞色素C检测不出来?

我用药物诱导细胞凋亡后,收集细胞,制备细胞裂解液后(常规方法制备,可能不包括线粒体中的蛋白),用15%的SDS-Page分离蛋白,然后15V,80min转0.22um的PDVF膜,1抗室温孵育2hr,2抗室温孵育1hr,然后显色观察。没有发现任何细胞色素c的条带出现。由于转膜后我的PDVF膜上存在5kd,10kd以及15kd的蛋白marker,所以个人推测转膜应该没有问题,因为细胞色素c大约为14kd左右,所以应该也能转上。但是为什么没有条带呢?
再补充一下:我以前做过活化的caspase-3的western,其分子量大概17kd,19kd,用上面的方法是可以检测出来的,但是为什么细胞色素c检测不出来呢?他们的分子量差不多啊。
注:转膜后发现与膜接触的那张滤纸上有10kd 的蛋白marker痕迹,是不是过转了?

请大家帮助我。在线等。
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flower-201[使用道具]
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你怎么制备蛋白?是只收集了细胞液?可能不包括线粒体中的蛋白??
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zhihui小新[使用道具]
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我是按每个样品加50ul裂解液(RIPA,PMSF,cocktail)然后吹打30次,冰上静置10min,高速离心20min,再冰上静置10min,蛋白定量后加loading buffer,99度加热5min离心后-20度保存。
这是我们实验室的常规制备方法,检测其他蛋白时都不错。就是细胞色素c搞不出来。怎么回事呢?
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leifengta[使用道具]
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正常情况下,Cytochrome C 位于线粒体内膜,裂解液中要含有约1% Triton X-100,并充分匀浆才有可能溶解下来。建议使用全细胞裂解液,即SDS-loading buffer去裂解细胞,效果更好。
细胞凋亡时,Cytochrome C有可能释放到胞浆,经常有人检测这一部分的Cyt C作为apoptosis的依据。但是这一部分的Cyt C量很少,要加大上样量。
我不清楚Caspase 3的亚细胞定位,如果和BCL2 及Bax一样,那就位于线粒体外膜上,朝向胞浆,比较容易提取。
此外,Apoptosis情况下,释放到Cyt C的量也是微乎其微的,建议使用更大的蛋白质上样量,缩短转膜时间(分子量较小),加长一抗孵育时间至2-3hrs,可以增强信号。因为即使以前我们制备线粒体,并以Cyt C作为control,信号也不是很强。
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zhihui小新[使用道具]
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请问:是不是分子量越小的蛋白转膜速度越快啊?而大分子量的蛋白转膜速度慢呢?如果转膜时间过长,会不会导致小分子量的蛋白转到滤纸上了。
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rxcc33[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 zhihui小新 于 2013-8-3 15:52 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

请问:是不是分子量越小的蛋白转膜速度越快啊?而大分子量的蛋白转膜速度慢呢?如果转膜时间过长,会不会导致小分子量的蛋白转到滤纸上了。

很对
小分子量可以用半干
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orangecake[使用道具]
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1. 如果你在滤纸上看到了maker,就表示很可能就是转过去了。
你做这么小的蛋白,PVDF膜的孔径多大呢?
最好用0.2um那种,一般不会转过去的。
如果你用的是0.45um的甚至更大的,就有可能转过去。所以下次你可以转膜轻点试试,滤纸上不能看到marker为好。

2. 你确定你的 primary antibody 没问题? 最好有个control,如果你从来没有用该抗体看到过条带,说明抗体的原因也得考虑考虑,不是吗?
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zhihui小新[使用道具]
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我的抗体是cell signaling的,应该没问题吧?
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S6044[使用道具]
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各位师兄,我想问一下,说明凋亡时,匀浆怎么排除线粒体中的cytc的影响,就只能证明你wb的是胞浆中凋亡释放的cytc呢
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windy+++[使用道具]
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使用线粒体胞浆分离试剂盒提取线粒体和去线粒体胞浆,然后分别检测细胞色素c,如果线粒体中减少,胞浆中增加可以证明细胞色素C的释放。
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