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标题:【求助】p-Akt压片曝光后为什么是这样的?

glass[使用道具]
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【求助】p-Akt压片曝光后为什么是这样的?

最近在做p-Akt的WB,简要步骤如下:用细胞提的蛋白,裂解液RIPA(中),蛋白上样量30ug,丽春红染膜后膜上有蛋白条带,5%BSA室温封闭2h,一抗稀释度1:2000(说明书),用1%BSA的TBST配的,4度过夜,二抗稀释度1:4000,同样是用1%BSA的TBST配的,室温1h,然后曝光。洗膜7min*5次,Tween-20含量0.1%。但不知道结果为什么是这样的,感觉背景深,非特异条带多,尤其是最下面那条(目的条带为上面一条较深的),不知大家有什么建议?


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2013-8-19 15:48
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tangxin_80[使用道具]
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原帖由 glass 于 2013-8-19 15:48 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
最近在做p-Akt的WB,简要步骤如下:用细胞提的蛋白,裂解液RIPA(中),蛋白上样量30ug,丽春红染膜后膜上有蛋白条带,5%BSA室温封闭2h,一抗稀释度1:2000(说明书),用1%BSA的TBST配的,4度过夜,二抗稀释度1:4000,同样是用1%BSA的TBST配的,室温1h, ...

加大稀释度
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QUOTE:
原帖由 glass 于 2013-8-19 15:48 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
最近在做p-Akt的WB,简要步骤如下:用细胞提的蛋白,裂解液RIPA(中),蛋白上样量30ug,丽春红染膜后膜上有蛋白条带,5%BSA室温封闭2h,一抗稀释度1:2000(说明书),用1%BSA的TBST配的,4度过夜,二抗稀释度1:4000,同样是用1%BSA的TBST配的,室温1h, ...

加大抗体稀释度,背景是可能会好些;但是有特异条带信号减弱的风险。你应该上调BSA的浓度到5%,可以参考我写的《WB实战指南》抗体孵育章节,尤其考虑到BSA的信价比。
从经验上判断,可能即使你换用了gelatin做封闭剂,底边的那条信号应该还是很浓,不过并不影响结果,不需要考虑
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abc816[使用道具]
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初步怀疑也是抗体稀释度的问题,是把一抗和二抗的稀释度都加大吗?同样也想到了加大稀释度,特异性条带信号会减弱的风险,所以还是比较难把握。
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fei1226com[使用道具]
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这个图可能是你的一抗特异性太差了的关系吧,如果可以的话考虑换个其他公司的抗体试试.
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pencil菲[使用道具]
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可以增大抗体的稀释度试试!
既然你订购是4060,为什么不按照说明书的建议来稀释抗体呢?
IMPORTANT: For western blots, incubate membrane with diluted antibody in 5% w/v BSA, 1X TBS, 0.1% Tween-20 at 4°C with gentle shaking, overnight.
从远处来看你这张图,倒不是非特异性条带多,而特别像一张考染的page胶,好像所有的条带信号都出来了,更像是封闭的问题了!
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kuaizige[使用道具]
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我最近刚做的p-Akt,情况一样,不影响结果,可能和抗体的特异性有关,可以换换抗体试试,多抗在特异性上不如单抗
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glass[使用道具]
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非常感谢你的建议!
我们一抗稀释度就是根据说明书来的,1:2000,但BSA浓度是1%,下次在做可能要用5%了,看看行不行。因为是磷酸化蛋白,所以就没用脱脂奶粉,因为因为脱脂奶粉中含有酪蛋白,会出现高背景,但它的封闭效果应该比BSA好,也试一下吧,我觉得现在背景倒是还可以。
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glass[使用道具]
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我们买的抗体就是单抗,不知你用的是哪家公司的抗体?
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summerxx[使用道具]
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请问楼主用的裂解液是自己配的,还是商品化的,配方是怎样的。我也在做这个蛋白,感觉不是很好做。我跟你能否多多交流
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