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标题:【求助】转膜恒压好还是恒流好?

yychen[使用道具]
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【求助】转膜恒压好还是恒流好?


我前次转膜使用的是恒压,即将电压设为150V,并做好冷却,但是真正转开时候只有105V,转膜2小时结束后电压降为80V,结果是预染MARKER从胶上转到了NC膜上,但是胶经过考染后还可以看到清晰的条带,我想问问各位高人,为什么预染MARKER从胶上转到了NC膜上,而蛋白却转不完全?另外,转膜恒压好还是恒流好?我的目的蛋白是42KD.
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yychen[使用道具]
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虽然想让它恒压可是电压就是往下掉。
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plaa[使用道具]
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你可以试一试100mA稳流转移2小时
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ukonptp[使用道具]
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先解决你第一个问题,150V恒压转膜但是真正转膜时电压却达不到,那是因为你设置了最大电流值。举个例子,假设你设置最大电流100mA,同时设置150V恒压转膜,可能当105V时电流就达到了100mA,所以电压就上不去了。要解决这个问题,你可以把最大电流值设的再大一些。
第二个问题,事实上,控制最适合的转移条件是比较困难的。不完全转移或过度转移很常见,只要最后抗体孵育后做出结果就可以了。
第三个问题,这是个见仁见智的问题。我们一般用恒压,因为它相对安全一些。转膜过程中,随着滤纸变干、电阻变大,如果恒流的话,那么电压势必增大,可能烧胶;如果恒压的话,只是电流减小一些而已。
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huifeng0516[使用道具]
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先慢转一个小时,再加大力度2-3个小时.这样的效果最好.
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8s5g[使用道具]
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转 膜:蛋白质经SDS-PAGE分离后,从凝胶中转移到固相支持物上,常用的支持物有:硝酸纤维膜即NC膜(AR0135)或PVDF膜。Tris/甘氨酸-SDS-PAGE结束后,取出凝胶,在Tris/甘氨酸缓冲液中漂洗数秒。蛋白质从凝胶向膜转移的过程普遍采用电转印法,包括湿式电转印和干式电转印。
1)干式电转印: 将转印槽阴极平放工作台上,并在上面加三张电转印液浸透的1mm厚的滤纸,将电转印液浸透0.45um的N.C膜放在滤纸上,再将凝胶平放在N.C膜上,最后在凝胶上加盖三层电转印液浸透1mm厚的滤纸,根据凝胶面积按1-2 mA/cm2, 接通电源,经1-1.5小时电转印。
2)湿式电转印: 打开电转印夹,每侧垫上一块专用的用转印液浸泡透的海面垫,再各放三块转印液浸透的滤纸,滤纸与海面垫大小相同或与NC膜、凝胶大小相同均可,将凝胶平放在阴极侧滤纸上,最后将NC膜平放在凝胶上,按照 (-) 夹板-海棉-滤纸-胶块-NC膜-滤纸-海绵-夹板 (+)装好,除尽气泡,夹好电转印夹。 电泳槽加满预冷电转印液,插入电转印夹,将电泳槽放入冰箱内,连接好电极,接通电流,转印夹的NC膜应对电泳槽的正极, 4℃ 250-300mA, 转印80min。
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uuooii[使用道具]
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我觉楼上的说法不是很准确,我认为电泳仪要么设为恒压,这样电流跟着电压变,要么设为恒流,这样电压跟着电流变,可以同时设定两个值的么?当然这个电压或电流值不是无限制的大,bio-rad的仪器有默认的最高电流500mA。另外,湿转的时候滤纸不是泡在缓冲液里的么,不会变干吧?当然随着离子的减少,电压升高是可能的。
我我觉得是不是三明治没有夹紧啊?可以多垫一些滤纸,夹好,100V 1.5-2h就可以了。
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xue258[使用道具]
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湿式电转印: 打开电转印夹,每侧垫上一块专用的用转印液浸泡透的海面垫,再各放三块转印液浸透的滤纸,滤纸与海面垫大小相同或与NC膜、凝胶大小相同均可,将凝胶平放在阴极侧滤纸上,最后将NC膜平放在凝胶上,按照 (-) 夹板-海棉-滤纸-胶块-NC膜-滤纸-海绵-夹板 (+)装好,除尽气泡,夹好电转印夹。 电泳槽加满预冷电转印液,插入电转印夹,将电泳槽放入冰箱内,连接好电极,接通电流,转印夹的NC膜应对电泳槽的正极, 4℃ 250-300mA, 转印80min。
我的蛋白就是40kDa左右,用了280mA,转印80min,效果很好,屡试不爽。你试试吧
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楼上的回答比较全面了,而且不与楼上的楼上的解释矛盾,因为他说的是半干转
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分子式[使用道具]
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我一直也想问同样的问题,综上所述,半干转是恒压好了,那湿转呢?

今天还发现一个奇怪的现象,事先设了100v,2h后去看,只有63v了,是湿转,biorad的,以为自己设错了,再试,结果设了100v,又跳回A了,400mA,还是60v左右,不知咋回事?哪位指点一二吧?
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